В настоящее время достаточно распространенной разновидностью травматических повреждений кожи является термическая травма (ТТ). Результаты многочисленных отечественных и международных эпидемиологических исследований свидетельствуют о неуклонном росте числа обожженных больных с определенными различиями в зависимости от расы, пола, возраста, региона проживания; в РФ в 2009 году ожоги зарегистрированы у 313,5 тыс. человек, их распространенность не имеет тенденции к уменьшению; по данным ВОЗ, термические поражения занимают 3 место среди других травм, в РФ на долю ТТ приходится 10–11 %. Изменение иммунореактивности при ТТ является ключевым звеном развития гнойно-септических осложнений, неэффективной репарации и др. неблагоприятных последствий. Одной из актуальных задач современной медицинской науки является поиск эффективных средств фармакологической коррекции метаболических, функциональных и структурных изменений в организме при различных заболеваниях человека. Особый интерес в этом отношении вызывают лекарственные препараты, созданные на основе эндогенных регуляторов гомеостаза. Ранее нами были продемонстрированы протекторные свойства церулоплазмина и альфа-1-кислого гликопротеина [1, 2]. Эритропоэтин (ЭПО) – гликопротеин, эритропоэтические свойства которого известны с 1906 года, когда Р. Carnot и J.W. Deflandre продемонстрировали, что плазма крови экспериментальных животных после кровопотери содержит фактор, вызывающий ретикулоцитоз у интактных животных. Современные представления о механизмах действия ЭПО на молекулярном уровне позволяют отнести его одновременно к гормонам, факторам роста и цитокинам [11]. Основной точкой приложения для действия ЭПО являются клетки эритроидного ряда в костном мозге, на которых имеются специфические рецепторы. Открытие рецепторов ЭПО на клетках неэритроидных тканей, таких как нейроны, кардиомиоциты, клетки почек, эндотелиоциты позволило обнаружить новые биологические эффекты ЭПО [3, 5, 6]. В последние годы внимание многих исследователей сосредоточено на негемопоэтических, плейотропных эффектах ЭПО, а обнаружение экспрессии гена рецепторов ЭПО и мРНК рецепторов ЭПО в различных популяциях лейкоцитов позволяет предположить иммунотропные эффекты ЭПО. Цель работы – исследовать влияние эритропоэтина на показатели врожденного иммунитета в ранние сроки экспериментальной термической травмы.
Материалы и методы исследования
Работа выполнена на 66 белых нелинейных крысах массой 180–220 г. находящихся в стандартных условиях вивария на типовом рационе в соответствии с нормами, утвержденными Приказом Минздрава СССР № 1179 от 10.10.1983 г., при свободном доступе к пище и воде при 12–14-часовом световом дне. Все манипуляции с экспериментальными животными выполнялись в соответствии с правилами гуманного отношения к животным, методическими рекомендациями по их выведению из опыта и эвтаназии, регламентированными «Правилами проведения работ с использованием экспериментальных животных» (Приказ МЗ СССР № 775 от 12.08.1977 г.) и положениями Хельсинской Декларации ВОЗ (1997). Для создания модели ТТ использовали плоскодонный стеклянный стакан из химического стекла с диаметром дна 4 см, наполненный дистиллированной водой с температурой 100 °С, время контакта с кожей для моделирования ТТ ІІІА степени составило 30 с. Площадь ожога вычисляли по формуле площади круга, в нашем эксперименте она составила 12,56 см². Для расчета поверхности тела у крыс использовали формулу Мее-Рубнера в модификации Lee:
S = К∙W 0,6,
где S – поверхность тела в квадратных сантиметрах; К – коэффициент, равный 12,54; W – вес животного в граммах. Площадь поверхности тела животных в нашем эксперименте составила 336,44 ± 12,67 см². Так как абсолютная площадь ожога была одинаковой во всех случаях (12,56 см²), то относительная площадь ожога составила 3,97 ± 0,14 %, т.е. около 4 %. ЭПО в составе препарата «Рекормон» (МНН: эпоэтин бэта, «Roche», Швейцария) вводился внутрибрюшинно, начиная с 1 суток, ежедневно в дозе 500 МЕ/кг массы в течение 5 дней, суммарная доза 2500 МЕ/кг. Контрольной группе животных с ТТ вводилось эквиобъемное количество стерильного физиологического раствора. Исследования проводили на 1, 2, 3, 4, 5 сутки.
Количество лейкоцитов в периферической крови и лейкоцитарную формулу определяли общепринятыми методами, лейкоформулу рассчитывали в абсолютных (109/л) величинах. Исследование поглотительной способности лейкоцитов периферической крови проводили на модели поглощения частиц монодисперсного (диаметр 1,7 мкм) полистерольного латекса. С помощью иммерсионной микроскопии учитывали активность фагоцитоза (ФА) – % клеток, захвативших хотя бы одну частицу латекса, интенсивность фагоцитоза (ФИ) – число поглощенных микросфер латекса в 100 подсчитанных клетках и фагоцитарное число (ФЧ) – число поглощенных микросфер латекса на один фагоцит. Исследование кислород-зависимого метаболизма фагоцитов периферической крови проводили, учитывая интенсивность восстановления нитросинего тетразолия (НСТ) в его нерастворимую форму – диформазан по методу А.Н. Маянского и М.Е. Виксмана (1979). Проводили спонтанный и индуцированный НСТ-тест (НСТТ) с учетом активности (% клеток) и интенсивности (у.е.). Статистический анализ проведен с использованием пакета прикладных программ Statistica for Windows v.10.0. Проверку статистических гипотез проводили с использованием критериев Краскела ‒ Уоллиса, Манна ‒ Уитни, Вальда ‒ Вольфовитца.
Результаты исследования и их обсуждение
При экспериментальной ТТ изменяется количественный состав лейкоцитов в периферической крови (табл. 1, 2). Общее количество лейкоцитов снижается в 1 сутки на правах тенденции, на 2–4 сутки – статистически значимо, к 5 суткам количество лейкоцитов не отличалось от группы интактных животных. При анализе лейкоцитарной формулы установлено, что на 1 сутки увеличивается количество палочкоядерных нейтрофилов, лейкопения на 2–4 сутки обусловлена снижением количества сегментоядерных нейтрофилов, лимфоцитов и моноцитов, на 5 сутки количество нейтрофилов не отличалось от группы интактных животных, сохранялась лимфоцитопения и моноцитопения. Преимущественно снижалось количество лимфоцитов (на 88,5; 85,6; 93,5 % соответственно на 2, 3 и 4 сутки) и моноцитов (на 80,0; 81,3; 90,7 % соответственно), в меньшей степени – нейтрофилов (на 56,2; 49,0; 76,5 % соответственно). Увеличение количества палочкоядерных нейтрофилов на 1 сутки ТТ может быть связано с выходом этой популяции нейтрофилов из костномозгового пула. Полагаем, что снижение количества фагоцитов в периферической крови на 2–4 сутки связано с выходом этих клеток первой линии обороны в очаг повреждения, восстановление количества нейтрофилов к 5 суткам связано с результатом реакции миелоидного ростка костного мозга на стимулирующие воздействия из очага повреждения. Развитие лимфоцитопении может быть обусловлено как выходом лимфоцитов в очаг термического повреждения (в меньшей степени, учитывая ранние сроки наблюдения), так и активацией гибели лимфоцитов в кровотоке.
Таблица 1
Влияние эритропоэтина на количественный состав лейкоцитов на 1-3 сутки экспериментальной термической травмы (M ± m)
Показатели |
Интактные (n = 6) |
ТТ 1 сутки |
ТТ 2 сутки |
ТТ 3 сутки |
|||
контроль (n = 6) |
+ ЭПО (n = 6) |
контроль (n = 6) |
+ ЭПО (n = 6) |
контроль (n = 6) |
+ ЭПО (n = 6) |
||
Лейкоциты, ∙109/л |
8,34 ± 0,98 |
4,89 ± 0,30 |
3,40 ± 0,64* |
2,29 ± 0,49* |
6,54 ± 0,51# |
3,42 ± 0,59* |
5,75 ± 0,63# |
ПЯН, ∙109/л |
0,27 ± 0,06 |
0,56 ± 0,08* |
0,19 ± 0,03# |
0,28 ± 0,06 |
0,38 ± 0,05 |
0,24 ± 0,07 |
0,32 ± 0,04 |
СЯН, ∙109/л |
3,06 ± 0,39 |
2,90 ± 0,20 |
1,86 ± 0,40 |
1,34 ± 0,30* |
3,60 ± 0,48# |
1,56 ± 0,43* |
3,02 ± 0,33 |
Лимфоциты, ∙109/л |
4,16 ± 0,49 |
1,12 ± 0,12* |
0,98 ± 0,20* |
0,48 ± 0,10* |
1,62 ± 0,21* # |
0,60 ± 0,18* |
1,77 ± 0,20* |
Моноциты, ∙109/л |
0,75 ± 0,16 |
0,30 ± 0,03* |
0,31 ± 0,04* |
0,15 ± 0,04 |
0,52 ± 0,06# |
0,14 ± 0,04* |
0,49 ± 0,07# |
Базофилы, ∙109/л |
0 |
0,01 ± 0,01 |
0,01 ± 0,01 |
0,03 ± 0,00 |
0,09 ± 0,05 |
0 |
0,04 ± 0,02 |
Эозинофилы, ∙109/л |
0,11 ± 0,14 |
0,03 ± 0,02 |
0,05 ± 0,02 |
0,02 ± 0,01 |
0,12 ± 0,02 |
0,03 ± 0,02 |
0,11 ± 0,06 |
Примечание. Здесь и далее * - статистически значимые (р < 0,05) различия с группой интактных животных, # - с группой контроля.
Таблица 2
Влияние эритропоэтина на количественный состав лейкоцитов на 4-5 сутки экспериментальной термической травмы (M ± m)
Показатели |
Интактные (n = 6) |
ТТ 4 сутки |
ТТ 5 сутки |
||
контроль (n = 6) |
+ ЭПО (n?=? = 6) |
контроль (n = 6) |
+ ЭПО (n = 6) |
||
Лейкоциты, ∙109/л |
8,34 ± 0,98 |
2,43 ± 0,36* |
8,89 ± 1,75# |
5,36 ± 0,65 |
6,03 ± 0,56 |
ПЯН, ∙109/л |
0,27 ± 0,06 |
0,15 ± 0,07 |
0,42 ± 0,21 |
0,34 ± 0,07 |
0,29 ± 0,02 |
СЯН, ∙109/л |
3,06 ± 0,39 |
0,72 ± 0,36* |
3,29 ± 1,59# |
2,97 ± 0,38 |
3,02??? ± 0,21 |
Лимфоциты, ∙109/л |
4,16 ± 0,49 |
0,27 ± 0,15* |
1,76 ± 0,75* # |
1,32 ± 0,13* |
1,98 ± 0,26* |
Моноциты, ∙109/л |
0,75 ± 0,16 |
0,07 ± 0,03* |
0,29??? ± 0,10* |
0,42 ± 0,07* |
0,71 ± 0,09 |
Базофилы, ∙109/л |
0 |
0,03 ± 0,02 |
0,02 ± 0,02 |
0,04 ± 0,04 |
0,02 ± 0,01 |
Эозинофилы, ∙109/л |
0,11 ± 0,14 |
0,02 ± 0,01 |
0,14 ± 0,06 |
0,06 ± 0,02 |
0,04 ± 0,02 |
При ТТ зафиксировано увеличение поглотительной способности и активация кислород-зависимого метаболизма фагоцитов (табл. 3, 4). Активность фагоцитоза значимо не изменяется во все сроки наблюдения, отметим, что, несмотря на снижение представительства фагоцитов в крови, % активно захватывающих частицы латекса клеток не уменьшился. Более того, на 1–5 сутки наблюдения возросла поглотительная активность отдельно взятого фагоцита по показателям интенсивности фагоцитоза и фагоцитарного числа. Кислород-зависимый метаболизм фагоцитов, оцениваемый в спонтанном НСТ-тесте, возрастал во все сроки наблюдения, при этом увеличивалось как количество активных клеток, так и способность к генерации активных кислород-содержащих метаболитов отдельной клеткой. Функциональный резерв фагоцитов, косвенно презентируемый показателями индуцированного НСТ-теста, также возрастал на 1–5 сутки наблюдения.
Показано, что активация циркулирующих фагоцитов при ТТ, особенно на 3–7 сутки, связана с Толл-подобными рецепторами (TLR), особенно TLR-2 и TLR-4 [12]. Гиперергия нейтрофилов после ТТ может лежать в основе повреждения многих органов и систем, развития синдрома полиорганной недостаточности за счет воздействия кислородных радикалов и ферментов лизосомального происхождения [13]. Избыточная активация нейтрофилов, повышение ими продукции АФК и ферментов имеют определяющее значение в повышении проницаемости сосудов не только in situ, но и отдаленно и приводить к развитию отеков тканей и органов после ТТ. В эксперименте показана прогностическая роль мониторинга НСТ-теста после ТТ: выживаемость выше, если первоначально НСТ-тест повышается, а затем постепенно снижается, непрерывный рост НСТ-теста приводит к неблагоприятным исходам [14].
Таблица 3
Влияние эритропоэтина на функциональную активность фагоцитов
на 1–3 сутки экспериментальной термической травмы (M ± m)
Показатели |
Интактные (n = 6) |
ТТ 1 сутки |
ТТ 2 сутки |
ТТ 3 сутки |
|||
контроль (n = 6) |
+ ЭПО (n = 6) |
контроль (n = 6) |
+ ЭПО (n = 6) |
контроль (n = 6) |
+ ЭПО (n = 6) |
||
АФ, % |
31,23 ± 2,76 |
30,43 ± 2,53 |
36,83 ± 2,15 |
26,33 ± 1,23 |
25,60 ± 1,63 |
21,33 ± 3,65 |
30,13 ± 1,52 |
ИФ, у.е. |
0,69 ± 0,07 |
1,14 ± 0,05* |
1,15 ± 0,05 |
0,96 ± 0,09* |
0,95 ± 0,17 |
0,96 ± 0,11* |
1,08 ± 0,04 |
ФЧ, у.е. |
2,23 ± 0,13 |
3,87 ± 0,33* |
3,02 ± 0,27 |
3,63 ± 0,23* |
3,74 ± 0,48 |
4,63 ± 0,33* |
3,56 ± 0,11 |
СНСТТ, акт-ть, % |
18,00 ± 2,46 |
32,43 ± 1,69* |
34,40 ± 2,11 |
31,33 ± 2,46* |
40,40 ± 2,16 |
24,71 ± 1,57 |
27,00 ± 1,04 |
СНСТТ, инт., у.е. |
0,27 ± 0,04 |
1,07 ± 0,03* |
0,99 ± 0,21 |
0,56 ± 0,05* |
0,52 ± 0,03 |
1,00 ± 0,16* |
1,19 ± 0,03 |
ИНСТТ, акт-ть, % |
28,90 ± 4,21 |
55,71 ± 3,45* |
69,50 ± 2,46# |
54,83 ± 6,16* |
52,80 ± 7,71 |
41,25 ± 3,00* |
51,88 ± 2,54 |
ИНСТТ, инт., у.е. |
0,40 ± 0,08 |
1,17 ± 0,01* |
1,47 ± 0,10* |
1,16 ± 0,19* |
0,75 ± 0,15* # |
1,76 ± 0,10* |
1,94 ± 0,03* |
Таблица 4
Влияние эритропоэтина на функциональную активность фагоцитов
на 4–5 сутки экспериментальной термической травмы (M ± m)
Показатели |
Интактные (n = 6) |
ТТ 4 сутки |
ТТ 5 сутки |
||
контроль (n = 6) |
+ ЭПО (n = 6) |
контроль (n = 6) |
+ ЭПО (n = 6) |
||
АФ, % |
31,23 ± 2,76 |
32,60 ± 1,44 |
23,75 ± 0,48* # |
27,71 ± 2,20 |
22,83 ± 0,95* |
ИФ, у.е. |
0,69 ± 0,07 |
0,85 ± 0,15 |
1,10 ± 0,04* |
0,91 ± 0,07 |
0,85 ± 0,04 |
ФЧ, у.е. |
2,23 ± 0,13 |
3,54 ± 0,37* |
4,03 ± 0,29* |
3,46 ± 0,29* |
3,73 ± 0,19 |
СНСТТ, акт-ть, % |
18,00 ± 2,46 |
27,83 ± 2,20* |
22,75 ± 0,48# |
31,57 ± 4,16* |
22,67 ± 0,99# |
СНСТТ, инт., у.е. |
0,27 ± 0,04 |
1,02 ± 0,05* |
0,54 ± 0,05* # |
0,96 ± 0,07* |
0,74 ± 0,06* |
ИНСТТ, акт-ть, % |
28,90 ± 4,21 |
48,33 ± 4,64* |
32,75 ± 0,48# |
46,47 ± 10,13* |
31,17 ± 0,95# |
ИНСТТ, инт., у.е. |
0,40 ± 0,08 |
0,93 ± 0,20* |
0,75 ± 0,06* |
1,33 ± 0,19* |
0,75 ± 0,11* # |
Применение при экспериментальной ТТ ЭПО приводит к повышению общего количества лейкоцитов на 2–4 сутки эксперимента, снижению выраженности лейкопении в ранние сроки ТТ (табл. 1, 2). Эффект ЭПО проявился за счет увеличения количества сегментоядерных нейтрофилов, моноцитов и лимфоцитов (на 2 сутки эксперимента), увеличения количества моноцитов (на 3 сутки), увеличения количества сегментоядерных нейтрофилов и лимфоцитов (на 4 сутки). ЭПО изменяет функциональную активность фагоцитов при экспериментальной ТТ (табл. 3, 4). Наиболее значимо эффект ЭПО проявился в отношении кислород-зависимого метаболизма фагоцитов на 4 и 5 сутки эксперимента: снижались активность и интенсивность спонтанного и индуцированного НСТ-теста, значения показателей приближались к соответствующим значениям в группе интактных животных. Нами не обнаружено статистически
значимого влияния ЭПО на поглотительную способность фагоцитов при экспериментальной ТТ во все сроки наблюдения.
Полагаем, что ЭПО обладает прямым специфическим действием на фагоциты в периферической крови, т.к. с использованием метода проточной цитометрии и обратной ПЦР были обнаружены экспрессия гена EPOR и мРНК EPOR на различных популяциях лейкоцитов [10]. Kristal B. et al. приводят данные о том, что ЭПО вызывает снижение продукции супероксид-анион-радикала in vivo и ex vivo и увеличивает стабильность (срок жизни) нейтрофилов in vitro. На системном уровне ЭПО снижает количество лейкоцитов за счет нейтрофилов и уровень щелочной фосфатазы плазмы [9]. Ранее нами был продемонстрирован антиоксидантный эффект ЭПО в плазме и в тромбоцитах у больных с терминальной стадией ХПН [4]. Полагают, что ЭПО может оказывать антиоксидантный эффект за счет активации внутриклеточных механизмов, в том числе в фагоцитирующих клетках, таких как гемоксигеназа-1 и глютатионпероксидаза, также может снижать внутриклеточное содержание железа (II) [8]. Вскрыты и более интимные механизмы прямого антиоксидантного действия ЭПО, который реализуется посредством активации антиоксидантного транскрипционного ядерного фактора-2 и, как следствие, изменением активности НАД(Ф)Н-оксидоредуктазы, глутатион-S-трансферазы α-1 и гемоксигеназы-1, что позволило авторам обозначить ЭПО как фактор с антиоксидантным и дезинтоксикационным действием [7, 15].
Выводы
- При экспериментальной термической травме на 2–4 сутки наблюдается лейкопения, обусловленная снижением количества лимфоцитов, моноцитов, сегментоядерных нейтрофилов в периферической крови, к 5 суткам нормализуется только количество нейтрофилов, сохраняется лимфоцитопения и моноцитопения.
- При оценке функциональной активности фагоцитов установлено, что на 1–5 сутки термической травмы увеличиваются поглотительная способность и кислород-зависимый метаболизм фагоцитирующих клеток в периферической крови.
- Применение ЭПО при экспериментальной термической травме приводит к снижению выраженности лейкопении на 2–4 сутки наблюдения за счет увеличения представительства в периферической крови сегментоядерных нейтрофилов, лимфоцитов и моноцитов.
- ЭПО при экспериментальной термической травме уменьшает количество и способность отдельного фагоцита к генерации активных кислородных метаболитов в спонтанном и индуцированном режимах на 4–5 сутки и не оказывает влияния на поглотительную способность фагоцитов.
Рецензенты:
Гизингер О.А., д.б.н., профессор кафедры микробиологии, вирусологии, иммунологии, клинической лабораторной диагностики, ГБОУ ВПО «Южно-Уральский государственный медицинский университет» Минздрава России, г. Челябинск;
Цейликман В.Э., д.б.н., профессор, заведующий кафедрой биологической химии, ГБОУ ВПО «Южно-Уральский государственный медицинский университет» Минздрава России, г. Челябинск.
Работа поступила в редакцию 07.05.2014