Согласно современным представлениям, основным и объективным признаком сахарного диабета (СД) считается наличие хронической гипергликемии, причинами которой является окислительный стресс, развивающийся как следствие повышенного аутоокисления глюкозы при одновременном снижении активности антиоксидантной системы.
При нормальных условиях беспредельному увеличению количества свободных радикалов и продуктов перекисного окисления липидов (ПОЛ) препятствуют системы естественных антиоксидантов, способных ингибировать свободнорадикальное окисление липидов. В организме одним из основных показателей гомеостаза является сохранение равновесия между скоростью ПОЛ и активностью антиоксидантной систем.
Нарушению гомеостаза могут способствовать и изменения в обмене микроэлементов, которые являются ценными участниками обменных процессов как в норме, так и припатологии. Однако, как показывают факты, элементный дисбаланс не просто сопровождает, но может и провоцировать развитие различных заболеваний, переводить заболевания в хроническую форму. Кроме того, изменить фармакокинетический ответ на лекарственное воздействие [2].
За последние годы в медицинской науке резко возрос интерес к изучению лечебных возможностей уникального индоламина – мелатонина (МТ). В настоящее время экспериментально обоснованы его универсальные терапевтические свойства в борьбе со многими заболеваниями. В круг его терапевтических возможностей входят разного рода возрастные патологии, органические поражения головного мозга, сердечно-сосудистые расстройства, заболевания ротовой полости и пр. [1]. В основе столь разнообразных форм патологии лежит формирование чрезмерного окислительного стресса. Однако, как показывает литературный анализ, МТ обладает выраженным антиоксидантным, антитоксическим, антистрессорным действием.
Целью настоящего исследования явилось изучение влияния мелаксена (синтетический аналог мелатонина) на показатели окислительного стресса и элементного дисбаланса при аллоксан-индуцированном сахарном диабете.
Материалы и методы исследования
Эксперименты были проведены на лабораторных мышах, у которых путем однократного подкожного введения аллоксана тетрагидрата в дозе 150 мг/кг был вызван аллоксановый диабет. Экспериментальных животных (n = 40) делили на 4 группы: первая группа – интактные животные, вторая – мыши, получавшие ежедневно в течении 14 дней мелаксен (0,1 мг/кг), третья группа – мыши с аллоксановым диабетом, четвертая – животные, получавшие мелаксен на фоне аллоксана.
На 15 сутки наблюдений животных декапитировали, забирали кровь для определения состояния про- и антиоксидантной системы и содержание макро- и микроэлементов.
Состояние антиоксидантной системы оценивали по активности ферментов супероксиддисмутазы (СОД) и каталазы (КАТ) в сыворотке крови, а выраженность окислительного стресса ‒ по концентрации малонового диальдегида (МДА) [4, 5, 6]. Содержание макро-(Na, K, Ca) и микро- (Zn, Fe, Cu) элементов определяли атомно-абсорбционным способом [3]. Статистическую обработку полученных результатов проводили параметрическим методом с использованием t-критерия Стьюдента.
Результаты исследования и их обсуждение
Данные об активности ферментов, обеспечивающих антиоксидантную защиту организма (СОД и КАТ) и показателя интенсивности свободнорадикального окисления (МДА) представлены в табл. 1.
Таблица 1
Показатели влияния мелаксена на выраженность ПОЛ и активности ферметов антиоксидантной защиты у животных с аллоксановым сахарным диабетом
|
Животные (n = 10) |
Активность СОД, ед. изм |
Активность КАТ, мкат/л |
МДА, нмоль/мл |
Глюкоза, ммоль/л |
|
Интактные |
2,55 ± 0,16 |
225,6 ± 2,1 |
3,72 ± 0,16 |
4,05 ± 0,39 |
|
Мелаксен |
2,35 ± 0,09 |
227,2 ± 2,8 |
2,3 ± 0,21* |
5,27 ± 0,30 |
|
С аллоксановым диабетом (контроль) |
1,45 ± 0,04* |
345,3 ± 3,3* |
8,2 ± 0,41* |
6,92 ± 0,88* |
|
Аллоксан. диабет+ мелаксен |
2,88 ± 0,10** |
219,5 ± 2,8** |
3,2 ± 0,13** |
3,66 ± 1,05** |
Примечания: * – р < 0,05. – достоверность различий при сравнении показателей опытныхгрупп с интактными.** p < 0,05 – достоверность различий при сравнении показателей опытных групп с контролем.
Согласно полученным данным, мелаксен снижает интенсивность перекисного окисления ПОЛ, что выражается в снижении содержания МДА до 2,3 ± 0,21 нмоль/мл в сравнении с величинами интактных животных 3,72 ± 0,16 нмоль/мл (р < 0,05). Активность СОД оказалась на 7,8 % ниже, чем у интактных мышей, однако эта разница была статистически недостоверной. Содержание КАТ оставалось неизменным.
Изучение в данной группе состояния микро- и макроэлементного статуса выявило, что мелаксен вызывает сдвиги в содержании изучаемых элементов, но и здесь заметных сдвигов не было обнаружено.
Во второй серии экспериментов у животных вызывали аллоксановый диабет. На 10-е сутки после однократного введения аллоксана наблюдалась выраженная гипергликемия (табл.1), что свидетельствовало о развитии СД. Содержание МДА в сыворотке крови у этих животных оказалось на 120 % выше, чем у интактных (3,72 ± 0,16 нмоль/мл в контроле), что указывало на активацию перекисного окисления липидов (ПОЛ). Активность СОД составляло 1,45 ± 0,04 ед., что на 43 % меньше, чем у интактных, а количество Кат больше на 53 %. Иными словами, развивался окислительный стресс, который привел к нарушению равновесия про- и антиоксидантного баланса.
Биохимические исследования элементного статуса также демонстрировали заметные сдвиги. Так, было установлено, что на 10-е сутки после введения аллоксана у животных снижалось содержание натрия (на 9,5 %) и калия (на 37 %). Концентрация кальция в крови у мышей с аллоксановым диабетом увеличивалась до 5,23 ± 0,06 моль/л (у интактных животных 1,85 ± 0,06). При этом величина калий-кальциевого коэффициента уменьшилась до 0,37, в то время как у интактных животных данный коэффициент составлял 1,6 (табл. 2).
При изучении содержания меди, железа и цинка в крови животных с аллоксановым диабетом было зарегистрировано снижение уровня меди до 8,34 ± 0,31 мкмоль/л (в контроле 9,07 ± 0,152 мкмоль/л p < 0,01), железа до 31,86 ± 2,65 мкмоль/л (при 41,39 ± 0,432 мкмоль/л в контрольной группе, p < 0,01) и цинка до 21,56 ± 0,34 мкмоль/л.
Таблица 2
Содержание микро- и макроэлементов в сыворотке крови у мышей с аллоксан-индуцированным сахарным диабетом
|
Натрий, ммоль/л |
Калий, ммоль/л |
Кальций, моль/л |
Цинк, мкмоль/л |
Железо, мкмоль/л |
Медь, мкмоль/л |
|
|
Интактные |
188,49 ± 1.27 |
3,049 ± 0,16 |
1,85 ± 0,06 |
25,49 ± 1,61 |
42,74 ± 0,43 |
9,07 ± 0,10 |
|
Мелатонин |
182,43 ± 1,27 |
2,95 ± 0,16 |
1,71 ± 0,064* |
24,58 ± 1,61 |
41,39 ± 0,43 |
9,07 ± 0,15 |
|
Аллоксан |
170,87 ± 7,03* |
1,94 ± 0,11* |
5,24 ± 0,06* |
16,27 ± 0,88* |
31,86 ± 2,65* |
8,34 ± 0,31* |
|
Аллосан+ мелатонин |
156,38 ± 5,58* |
2,28 ± 0,14* |
5,85 ± 0,23* |
21,56 ± 0,34* |
53,58 ± 1,90* |
8,85 ± 0,59* |
Примечание: * – p < 0,01.
Для коррекции избыточного процесса ПОЛ и нарушений антиоксидантной системы мышам с экспериментальным СД вводили мелаксен. Введение препарата сопровождалось снижением концентрации МДА на 60 %. На фоне введения адаптогена улучшилась и активность ферментов антиоксидантной защиты. Активность СОД практически восстановилась до уровня контроля. Содержание каталазы в сыворотке крови мышей демонстрировало тенденцию к снижению, но оставалось достоверно выше значений, характерных для контрольных животных.
Полученные результаты свидетельствуют об эффективности использования мелатонина для коррекции системы антиоксидантной защиты в экспериментальном сахарном диабете и соотношения между эссенциальными макро- и микроэлементами.
Результаты наших исследований подтверждают существование у мелатонина защитных, антиоксидантных, антидиабетических свойств. С приведёнными сведениями совпадают результаты исследований invitro. Например, в островковом аппарате Лангерганса мышей с аллоксановым диабетом неизменно отмечались тяжёлые дегенеративные изменения. Если же таким животным предварительно вводили МТ (ежедневно по 0,15 мг/кг в течение 2 недель), то число и ультраструктура выделенных у них бета-клеток не отличались от аналогичных морфологических характеристик у нормальных и, что особенно показательно, – у старых мышей. С другой стороны, у эпифизэктомированных крыс показано снижение плотности островков и гибель их клеточных элементов [8, 12]. Добавление МТ в инкубационную среду, содержавшую культуру гепатоцитов, полученных от мышей с алиментарным диабетом, увеличивало в них синтез гликогенов через повышение фосфорилирования при участии протеинкиназы, и такое действие устранял антагонист МТ лузиндол [14]. Интересно, что МТ облегчал также приживление пересаженного островкового аппарата поджелудочной железы мышам с диабетом [10].
Результаты пока немногочисленных исследований на людях в принципе совпадают с экспериментальными находками и подтверждают вероятность существования у МТ защитных, антидиабетических свойств. В развитии метаболического синдрома, ассоциированного с диабетом 2 типа и кардиоваскулярными расстройствами, как известно, ключевую роль играет резистентность к инсулину. Судя по наблюдениям за больными, страдающими такой патологией, у них зачастую расстраивается нормальное соотношение между содержанием в плазме крови МТ и инсулина, что позволяет авторам подозревать участие эпифизарной недостаточности в патогенезе метаболического синдрома [13]. При назначении пожилым пациентам с инсулиннезависимым диабетом на протяжении месяца МТ (по 5 мг ежедневно) продемонстрировано улучшение их клинического состояния при одновременном ослаблении проявлений оксидантного стресса в виде повышения активности эритроцитарной супероксиддисмутазы и снижения уровня малонового диальдегида [9].
Участие МТ в контроле за метаболизмом углеводов и его вклад в происхождение сахарного диабета реализуется, очевидно, несколькими путями, но главную роль, по всей вероятности, следует отвести прямому вмешательству в функцию клеточных элементов островков Лангерганса поджелудочной железы. И осуществляется такое воздействие посредством специфических МТ рецепторов 1 и 2 типа, идентифицированных на поверхности мембран бета- и альфа-клеток как грызунов, так и человека. При этом в первых клетках найдена экспрессия мРНК рецепторов МТ2, а во вторых – МТ1 рецепторов [11].
Проведенные нами исследования микроэлементного статуса животных с аллоксан-индуцированным сахарным диабетом показали также заметные нарушения в содержании макро- и микроэлементов. Снижение содержания цинка, меди и железа, возможно, объясняются целым рядом интересных функциональных и морфологических связей. Так, например, цинк играет существенную роль при синтезе, накоплении и освобождении инсулина в клетках поджелудочной железы [7]. Инсулин накапливается в поджелудочной железе в форме комплекса «цинк-инсулин», в котором содержится прибл. 0,5 % цинка. В исследованиях in vitro цинк повышает связывание инсулина с мембраной клетки, тормозит липолиз и повышает липогенез; далее повышается перенос глюкозы, а также окисление в адипоцитах. У крыс с дефицитом цинка активность фермента карбоксипептидазы, которая преобразует проинсулин в инсулин, снижается вдвое при одновременном компенсаторном увеличении активности трипсина на 100 %. Это объясняется тем, что ионы цинка, с одной стороны, повышают растворимость проинсулина, с другой, снижают растворимость инсулина, то есть осаждение и кристаллизация инсулина зависимы от цинка [7]. К одному из важных факторов развития диабета и его сосудистых осложнений, как ранее говорилось, относится развитие окислительного стресса. Учитывая, что медь является кофактором фермента супероксиддисмутазы, а избыток железа в организме может играть роль промотора перекисного окисления липидов и способствовать развитию окислительного стресса [2], то следует отметить, что нарушения обмена МЭ не всегда являются первичными и ведущими, но они могут быть существенными для диагностики и лечения. Поскольку выявляемые даже незначительные нарушения их метаболизма позволяют обеспечить своевременную донозологическую диагностику заболеваний и контролировать эффективность лечения [2], то подкомитет ООН по здравоохранению и медицинской технике рекомендует контроль содержания в организме человека, по крайней мере, таких элементов, как Na, K, Mg, Ca, Fe, Zn, Cu, Co, Se, Ni.
Рецензенты:
Бейер Э.В., д.м.н., профессор кафедры фармакологии Ставропольского государственного медицинского университета, г. Ставрополь;
Алиева Е.В., д.м.н., заведующая лабораторией МУЗ «Детская клиническая поликлиника № 3», г. Ставрополь.
Работа поступила в редакцию 01.08.2013.