Scientific journal
Fundamental research
ISSN 1812-7339
"Перечень" ВАК
ИФ РИНЦ = 1,674

ROLE OF ERYTHROPOIETIN IN IMPLEMENTATION OF PLATELET-CELL INTERACTIONS IN THE BLOOD IN CASE OF CHRONIC RENAL FAILURE

Osikov M.V. 1 Grigoryev T.A. 2 Fedosov A.A. 1
1 «Chelyabinsk State Medical Academy of Health Ministry of Russia», Chelyabinsk
2 Chelyabinsk Regional Hospital, Chelyabinsk
The study presents platelet-cell interaction in the blood in case of endogenous erythropoietin deficiency (EPO) (group II, n = 24) and the administration of exogenous EPO (group III, n = 38) in patients with chronic renal failure (CRF) undergoing long-term treatment in dialysis unit of Chelyabinsk Regional Hospital. Clinically healthy volunteers were enrolled in control group (group I, n = 25). Recombinant human EPO in Recormon® (INN: epoetin beta, manufactured by Roche, Switzerland) was injected at a single dose of 2000–4000 IU, total dose of about 50,000 IU. Platelet-leukocyte interactions were studied by flow cytometry using monoclonal antibodies labeled with CD41-FITC; CD61-FITC; CD42b-PE. Having mixed and incubated the suspension of erythrocytes and platelets, erythrocyte-platelet co-aggregations were counted in Goryaev chamber. In case of chronic renal failure it was revealed that platelet-neutrophil and platelet-monocyte co-aggregation amount increases and platelet-lymphocyte and platelet-erythrocyte co-aggregations amount decreases. The administration of EPO results in partial (the interaction of platelets with monocytes) or complete (platelet interaction with neutrophils, lymphocytes, and erythrocytes) normalization of cell cooperation. The mechanism of EPO action as well is due to the increase of erythrocyte production in the peripheral blood.
erythropoietin
platelets
blood cells cooperation
chronic renal failure
1. Osikov M.V., Krivohizhina L.V. Tromboz, gemostaz i reologija., 2005, no. 4, pp. 55–60.
2. Osikov M.V. Reaktivny’e izmeneniya kletochnogumoral`noj sistemy’ organizma kak tipovoj patologicheskoj processii ego regulyaciya reaktantami ostrojfazy’ [Jet changes of cellular and humoral system of an organism as standard pathological processions its regulation by reactant of a sharp phase], Avtoref. dis. d-ra med. nauk. Chelyabinsk, 2008. 44 p.
3. Osikov M.V., Krivohizhina L.V., Ahmatov K.V., Ahmatov V.Ju. Analiz gematologicheskih jeffektov jeritropojetina u bol’nyhh ronicheskoj pochechnoj nedotatochnost’ju, nahodjawihsja na dialize [Analysis of haematological effects of erythropoietin in patients with chronic renal failure on dialysis]. Vestnik Juzhno-Ural’skogogo sudarstvennogo universiteta. 2009, no. 20 (153), vol. 19. pp. 79–82.
4. Osikov M.V., Bjulleten’j eksperimental’noj biologii i mediciny – Bulletin of Experimental Biology and Medicine, 2012, vol. 153, no. 1, pp. 27–30.
5. Amer J., Dana M., Fibach E. Anemia, 2010, 978710, Epub 2010 Dec.
6. Bonomini M., Pandolfi A., Di Pietro N. Kidney Int., 2005, vol. 67, no 5, p. 1899–1906.
7. Borges A., Borges M., Fernandes J. Ren. Fail., 2011, vol. 33, no 2, p. 138–143.
8. Da Costa Martins P., van den Berk N., Ulfman L.H. Arterioscler. Thromb. Vasc. Biol., 2004, vol. 24, no 1, p. 193–199.
9. Ehlers R., Ustinov V., Chen Z. J. Exper. Med., 2003, vol. 198, no 7, p. 1077–1088.
10. Goel M.S., Diamond S.L. Blood, 2002, vol. 100, no 10, p. 3797–3803.
11. Lisowska K.A., Dębska-Ślizień A., Jasiulewicz A.J. Recept. Signal. Transduct. Res., 2011, vol. 31, no 3, p. 241–246.
12. Pereira R., Costa E., Goncalves M. Hemodial. Int., 2010, vol. 14, no 3, p. 295–301.
13. Schramm R., Kirsch S., Schäfers H.J. J. Heart Lung. Transplant., 2010, vol. 29, no 10, p. 1185–1192.
14. Sirolli V., Strizzi L., Di Stante S. Thromb. Haemost., 2001, vol. 86, no 3, p. 834–839.
15. Taoufik E., Petit E., Divoux D. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 2008, vol. 22, no 105, p. 6185–6190.

Эритропоэтин (ЭПО) секретируется в кровь пери- и тубулярными клетками почек в физиологических условиях, что обеспечивает его постоянный базальный уровень в крови, который в свою очередь значительно возрастает при адаптации к гипоксии, когда синтез и секреция ЭПО повышаются в десятки раз. Наличие ЭПО в крови обеспечивает его постоянный контакт с эндотелиоцитами и клетками крови. Рецепторы для ЭПО обнаружены на эндотелиальных клетках, можно предположить их наличие на клетках крови, в первую очередь, на различных популяциях лейкоцитов и тромбоцитах, учитывая, в том числе, тот факт, что многие протекторные эффекты ЭПО, особенно при токсическом и/или гипоксическом повреждении клеток, реализуются через рецептор-1 опухольнекротизирующего фактора, а также сопряжены с активацией субъединицы ?сR КСФ-ГМ, ИЛ-3, ИЛ-5 [15]. Это позволяет предположить вмешательство ЭПО в реализацию функциональной активности тромбоцитов, в том числе межклеточные взаимодействия, опосредованные изменением экспрессии адгезивных молекул, трансформацией мембранных фосфолипидов и др. факторами. Ранее нами продемонстрированы негемопоэтические эффекты ЭПО при хронической почечной недостаточности (ХПН) [4].

Цель исследования – изучение влияние эритропоэтина на тромбоцитарно-клеточные взаимодействия в крови при хронической почечной недостаточности.

Материал и методы исследования

Первоначально обследовано 160 больных с терминальной стадией ХПН, находящихся на постоянном лечении в отделении диализа ГБУЗ «Челябинская областная клиническая больница». После рандомизации в исследование включено 62 больных, в том числе 32 женщины и 30 мужчин, средний возраст 47,96 ± 1,33 лет. Критерии исключения: декомпенсация со стороны сердечно-сосудистой, дыхательной, пищеварительной систем; наличие в анамнезе туберкулеза, венерических заболеваний, гепатита, ВИЧ-инфекции, онкологической патологии; острые нарушения церебрального кровообращения; наличие острого воспалительного процесса; больные с гематологическими заболеваниями и системными васкулитами; беременность. Все больные ХПН 3 раза в неделю в течение 4 часов получали гемодиализную терапию на аппаратах «Искусственная почка» 4008S/BIBAG фирмы «Fresenius» (Германия). Контрольная группа (группа I, n = 25) представлена клинически здоровыми добровольцами – донорами областной станции переливания крови г. Челябинска, не имеющими соматической патологии и сопоставимыми по возрасту и полу с основными группами. Группа II – больные ХПН, находящиеся на гемодиадизе (n = 24). Группа III – больные ХПН, находящиеся на гемодиадизе и получающие рекомбинантный человеческий ЭПО в составе препарата «Рекормон» (МНН: эпоэтин бэта, «Roche», Швейцария) 2 раза в неделю внутривенно в дозе 2000–4000 МЕ в течение 2 месяцев (n = 38). Суммарная доза введенного ЭПО составила около 50000 МЕ. Кровь для исследований у больных ХПН забирали из артериального колена артерио-венозной фистулы до сеанса гемодиализа.

Тромбоцитарно-лейкоцитарные взаимодействия исследовали на проточном цитофлюориметре «FACS Canto-II» (Becton Dickinson, США) с использованием моноклональных антител, меченных CD41- FITC (Beckman Coulter, США); CD61- FITC (Beckman Coulter, США); CD42b – РЕ (BD Pharmingen, США). Субпопуляции лейкоцитов (лимфоциты, моноциты и нейтрофилы) выделяли по интенсивности экспрессии CD45 и характеристикам светорассеяния. Учитывая, что гликопротеины CD41+, CD42b+, CD61 + присущи только тромбоцитам, свечение их на лейкоцитах свидетельствует о кооперации лейкоцитов с тромбоцитами. Оценка тромбоцитарно-лейкоцитарных коопераций осуществлялась по относительному количеству лимфоцитов, моноцитов, гранулоцитов, взаимодействующих с тромбоцитами. Эритроцитарно-тромбоцитарные взаимодействия исследовали после перемешивания и инкубации суспензии эритроцитов и тромбоцитов с концентрацией 300•109/л и 10•1010/л соответственно: в камере Горяева подсчитывали количество эритроцитарно-тромбоцитарных коагрегатов (ЭТК) в единице объема; коагрегаты дифференцировали на малые (количество эритроцитов и тромбоцитов в розетке не превышает 3 клеток) и большие (количество эритроцитов и тромбоцитов в розетке больше 3) [1, 2, 14]. Количество тромбоцитов определяли на гематологическом анализаторе фирмы «Orphee» (Япония) волюмометрическим методом. Статистическую обработку результатов проводили с использованием пакета прикладных программ «Statistica v. 6.0 for Windows». Характеристика выборок представлена в формате «М ± m», где М – среднее арифметическое значение признака, m ? стандартная ошибка среднего. Для анализа вида распределения данных применяли критерий Шапиро-Уилка, для проверки равенства дисперсий в груп-
пах – критерий Левена. Проверку статистических гипотез в группах проводили с использованием критериев Манна-Уитни (U), Вальда-Вольфовитца (WW). Отличия считали статистически значимыми при р < 0,05. Для оценки связи между показателями использовали методы корреляционного анализа с вычислением коэффициента корреляции Спирмена (R).

Результаты исследования и их обсуждение

Установлено, что у больных ХПН адгезия тромбоцитов с нейтрофилами и моноцитами увеличивается, причем в большей степени с моноцитами (прирост 84 %), а не с нейтрофилами (прирост 31 %) (табл. 1). В то же время количество тромбоцитарно-лимфоцитарных коагрегатов снижается в среднем на 27 %. Показателен сам факт тромбоцитарно-лейкоцитарных взаимодействий, учитывая известные агрессивные свойства лейкоцитов, в первую очередь, фагоцитов. Оказывается, что структурное взаимодействие тромбоцитов с нейтрофилами и моноцитами приводит к взаимной активации этих клеток по аутокринному и паракринному механизмам. В частности, у нейтрофилов и моноцитов повышается адгезия, хемотаксис, хемокинез и фагоцитарная активность, у тромбоцитов активируется метаболизм, что отражается увеличением синтеза тромбоксана А2 и других факторов. Тромбоцитарно-моноцитарная коагрегация регулирует участие моноцитов не только в фагоцитарных реакциях, но и в коагуляционном каскаде в связи с экспрессией тканевого фактора, β2-интегринов и секрецией цитокинов [8]. Механизмы, опосредующие тромбоцитарно-лейкоцитарные взаимодействия, до конца не ясны. Полагают, что взаимодействие тромбоцитов с нейтрофилами определяются Р-селектином на тромбоцитах и L-селектином на лейкоцитах, более прочные связи образуются между ICAM-2 и Gp IIb-IIIa на тромбоцитах и β2-интегрином на нейтрофилах [9].

Кроме взаимодействия с лейкоцитами, тромбоциты активно вступают в контакт с эритроцитами. В табл. 2 приведены данные о количестве тромбоцитарно-эритроцитарных коагрегатов у больных ХПН. Установлено, что количество тромбоцитарно-эритроцитарных коагрегатов уменьшается за счет малых и больших форм. Возможно, что феномен тромбоцитарно-эритроцитарных взаимодействий в крови может отражать трофическую функцию эритроцитов по отношению к кровяным пластинкам, т.к эритроцитарные мембраны могут выступать в качестве доноров фосфолипидов для тромбоцитов. Показано, что в организме происходит прямой и быстрый обмен между плазменными и тромбоцитарными фосфолипидами с последующим их включением в мембранные липиды. Известно, что эритроциты при ХПН имеют количественные и качественные изменения фосфолипидного состава мембран: за счет активации процессов свободно-радикального окисления снижена подвижность ацильных цепей фосфолипидов и увеличена упорядоченность мембранных липидов и полярность липидного бислоя, повышается содержание фосфатидилсерина на поверхности эритроцита. Важным следствием экстернализации фосфатидилсерина является феномен повышенной адгезивности эритроцитов к сосудистому эндотелию и клеткам крови [6].

Кроме этого, нельзя исключить взаимные регуляторные влияния эритроцитов и тромбоцитов. В литературе есть данные о повышении функциональной активности тромбоцитов, контактирующих с эритроцитами, опосредованной увеличением синтеза тромбоксана А2. Механизмы, обеспечивающие тромбоцитарно-эритроцитарные взаимодействия в крови, точно неизвестны. Полагают, что они могут быть связаны с тромбоцитарными рецепторами GрIIIb (CD36) и Gр Ib, но не с vWF, тромбоспондином, Р-селектином и СD47 [10]. Экспозиция эритроцитов с тромбоцитами оказывает проагрегантный эффект, приводит к высвобождению тромбоцитарных факторов Р3, Р4, Р10. Механизмом активации тромбоцитов является усиление процессов перекисного окисления липидов не только в плазме, самих тромбоцитах, но и в эритроцитах [2]. Можно предположить, что формирование тромбоцитарно-эритроцитарных коагрегатов вносит вклад в изменение гемореологии у больных ХПН, аналогично тому, как это установлено в патогенезе инсулинзависимого сахарного диабета и некоторой хирургической патологии.

Изменение кооперации тромбоцитов и эритроцитов у больных ХПН зависит от развития анемии. Ранее нами была зафиксирована нормохромная, нормоцитарная анемия у больных ХПН [3]. Обнаружено, что общее количество тромбоцитарно-эритроцитарных коагрегатов до процедуры гемодиализа уменьшается по мере снижения количества эритроцитов в периферической крови (коэффициент корреляции Спирмена R = 0,65; р < 0,05). В то же время общеизвестно, что эритроцитам принадлежит ключевая роль в формировании гемореологии, особенно на уровне микроциркуляции, что определяется их количеством и поведением в кровотоке.

Установлено значимое влияние ЭПО на кооперацию тромбоцитов с другими клетками крови, лейкоцитами и эритроцитами, у больных ХПН (табл. 1, 2). Так, ЭПО уменьшает количество тромбоцитарно-нейтрофильных и тромбоцитарно-моноцитарных коагрегатов и увеличивает количество тромбоцитарно-лимфоцитарных коагрегатов.

Таблица 1

Влияние эритропоэтина на тромбоцитарно-лейкоцитарные взаимодействия у больных ХПН (M ± m)

Группы

Показатели

Группа 1:

здоровые (n = 25)

Группа 2:

ХПН (n = 24)

Группа 3: ХПН + ЭПО (n = 38)

Тромбоцитарно-нейтрофильные агрегаты, % клеток

24,58 ± 0,93

32,16 ± 4,05

р1 < 0,001

(WW)

24,78 ± 0,71

р2 < 0,001

(WW)

Тромбоцитарно-моноцитарные агрегаты, % клеток

23,12 ± 0,79

42,59 ± 5,54

р1 = 0,001 (WW)

29,75 ± 1,96

р1 = 0,04

р2 = 0,002 (WW)

Тромбоцитарно-лимфоцитарные агрегаты, % клеток

20,76 ± 0,63

15,17 ± 0,64

р1 < 0,001

21,22 ± 0,76

р2 < 0,001

Примечание. Здесь и далее р - показатель значимости различий между группами по критерию Манна-Уитни (WW –Вальда-Вольфовитца).

Полагаем, что снижение способности тромбоцитов к взаимодействию с нейтрофилами и моноцитами в определенной мере обусловлено уменьшением представительства Gp IIb-IIIa на поверхности тромбоцитов. В то же время изменение тромбоцитарно-лейкоцитарных взаимодействий может быть связано с влиянием ЭПО не только на тромбоциты, но и на лейкоциты. Показано, что нейтрофилы, моноциты, Т- и В-лимфоциты экспрессируют на своей поверхности рецепторы к ЭПО, что предполагает участие ЭПО в важных внутриклеточных сигнальных путях, опосредующих функциональную активность и жизнеспособность этих клеток. В частности, ЭПО обладает способностью снижать адгезивную способность фагоцитов к эндотелию в патогенезе постишемической дисфункции миокарда [13]. У больных ХПН ЭПО предупреждает чрезмерную активацию фагоцитов в ходе диализной процедуры [12]. Кроме того, известно, что у больных ХПН, получающих гемодиализную терапию, усиливается апоптоз лимфоцитов, в особенности Т-лимфоцитов [7]. ЭПО как антиапоптогенный фактор может подавлять апоптоз и, как следствие, увеличивать количество функционально активных лимфоцитов, способных взаимодействовать с тромбоцитами. Полагают, что такие эффекты ЭПО опосредованы рецептор I опухольнекротизирующего фактора и обеспечиваются внутриклеточной перекрестной сигнализацией через активацию антиапоптического транскрипционного фактора NF-kappaB и JANUS-2/STAT киназы с последующей активацией экспрессии генов bcl-XL и синтеза антиапоптогенных белков [15]. Причем, эффекты ЭПО на экспрессию pSTAT5 в CD4 + лимфоцитах являются дозозависимыми [11].

Применение ЭПО у больных ХПН приводит к повышению, и как следствие, нормализации количества эритроцитарно-тромбоцитарных коагрегатов (табл. 2). Эффекты ЭПО реализуются за счет их влияния на формирование малых коагрегатов.

Таблица 2

Влияние эритропоэтина на тромбоцитарно-эритроцитарные взаимодействия
у больных ХПН (M ± m)

Группы

Показатели

Группа 1:

здоровые (n = 25)

Группа 2:

ХПН (n = 24)

Группа 4:

ХПН + ЭПО (n = 38)

Малые коагрегаты, •109

109,82 ± 8,15

76,84 ± 8,08

р1 < 0,01

98,18 ± 5,36

р2 = 0,005 (WW)

Большие когрегаты, •109

10,73 ± 1,87

7,48 ± 1,19

р1 = 0,05 (WW)

8,73 ± 1,29

Всего, •109/л

120,55 ± 9,55

84,32 ± 9,12

р1 = 0,01

106,91 ± 6,32

р2 = 0,005 (WW)

Полученные результаты могут быть связаны с протекторными эффектами ЭПО в отношении эритроцитов в кровотоке. Имеются сведения о прямом антиоксидантном эффекте ЭПО в отношении эритроцитов, который связан с увеличением содержания глутатиона, снижением генерации кислородных радикалов, накоплением гидроперекисей липидов и, как следствие, стабилизацией цитоплазматической мембраны, маркируемой экстернализацией фосфатидилсерина [5]. Кроме этого, нельзя исключить тот факт, что восстановление тромбоцитарно-эритроцитарных взаимодействий, определяемое по количеству коагрегатов, может быть обусловлено увеличением количества тромбоцитов и эритроцитов в крови на фоне применения ЭПО. Обнаружена положительная слабая связь между количеством тромбоцитарно-эритроцитарных коагрегатов и количеством эритроцитов в крови (R = 0,27; р < 0,05).

Выводы

Таким образом, у больных ХПН изменяется кооперация тромбоцитов с другими клетками крови: увеличивается количество тромбоцитарно-нейтрофильных и тромбоцитарно-моноцитарных коагрегатов, уменьшается количество тромбоцитарно-лимфоцитарных и тромбоцитарно-эритроцитарных коагрегатов. ЭПО вмешивается в реализацию тромбоцитарно-клеточных взаимодействий в крови у больных ХПН и приводит к частичной или полной нормализации клеточной кооперации. Механизм действия ЭПО, в том числе, обусловлен увеличением количества эритроцитов в периферической крови.

Исследование выполнено при финансовой поддержке Российского фонда фундаментальных исследований, проект 12-04-31726 «Механизм влияния эритропоэтина на функциональную активность тромбоцитов».