Научный журнал
Фундаментальные исследования
ISSN 1812-7339
"Перечень" ВАК
ИФ РИНЦ = 1,749

ВЛИЯНИЕ АНТИОКСИДАНТОВ НА РАЗВИТИЕ ШТАММОВ KLEBSIELLA PNEUMONIAE

Мирошниченко А.Г. 1 Брюханов В.М. 1 Бутакова Л.Ю. 1 Госсен И.Е. 1 Перфильев В.Ю. 1 Смирнов П.В. 1
1 ГБОУ ВПО «Алтайский государственный медицинский университет» Минздрава России
Проведено исследование влияния антиоксидантов (восстановленный глутатион, аскорбиновая кислота, N-ацетилцистеин, метилэтилпиридинол) в концентрациях 0,5, 1, 2 и 4 мМ на развитие трех штаммов Klebsiella pneumoniae при инкубации в условиях минеральной питательной среды М9 в течение 24 часов. Установлено, что в присутствии восстановленного глутатиона происходит усиление развития штаммов микроорганизма, при этом сила указанного эффекта не имеет явной зависимости от концентрации антиоксиданта. N-ацетилцистеин оказывает аналогичное, но менее выраженное действие. Указанные эффекты антиоксидантов проявляются в лог-фазу развития микроорганизмов и ускоряют достижение предела биомассы, обусловленного ограниченностью питательных веществ инкубационной смеси. Аскорбиновая кислота и метилэтилпиридинол в изученных концентрациях проявляют бактериостатические свойства, степень выраженность которых прямопропорциональна концентрации антиоксидантов.
антиоксиданты
глутатион
аскорбиновая кислота
N-ацетилцистеин
метилэтилпиридинол
бактерия
Klebsiella pneumoniae
1. Лакин Г.Ф. Биометрия: учеб. пособие для биол. спец. вузов. – 4-е изд., перераб. и доп. – М.: Высш. шк., 1990 – 352 с.
2. Babior B.M. Oxygen-dependent microbial killing by phagocytes // New. Engl. J. Med. – 1978. – Vol. 298. – P. 656.
3. Fanton J.C. Role of oxygen-derived free radicals and metabolites in leukocyte dependent inflammatory reactions / J.C. Fanton, P.A. Ward // Am. J. Pathol. – 1982. – Vol. 107. – P. 397–418.
4. Goswami M. Effects of glutathione and ascorbic acid on streptomycin sensitivity of Escherichia coli / M. Goswami, S.H. Mangoli, N. Jawali // Antimicrobial agents and chemotherapy. – 2007. – Vol. 51. – № 3. – P. 1119–1122.
5. McCormick W.J. Ascorbic acid as a chemotherapeutic agent // Arch. Pediatr. – 1952. – Vol. 69. – № 4. – P. 151.
6. Nathan, C.F. Secretory products of macrophages // J. Clin. Invest. – 1987. – Vol. 79. – P. 319–326.

Широкое распространение инфекционных заболеваний, вызываемых бактериями, обусловило необходимость создания высокоэффективных антибактериальных средств. Вместе с тем следует отметить, что фармакотерапия инфекционного больного, как правило, не ограничивается применением антимикробных средств. В схемы лечения таких больных включаются различные препараты, способствующие ускорению элиминации возбудителя, нормализующие метаболические процессы в организме больного.

Попадая в организм человека, бактериальные клетки сталкиваются с естественными механизмами защиты, в том числе имеющими прооксидантный компонент, направленный на деструкцию бактерий. Скорость гибели возбудителей в организме человека прямо пропорциональна скорости продукции активных форм кислорода макрофагами [3, 6]. Нарушение образования клетками супероксиданион-радикала может привести к повышению восприимчивости организма к инфекционным заболеваниям [2].

С другой стороны, оксидативный стресс, сопровождающий инфекционный процесс, оказывает негативное влияние как на состояние иммунной системы, так и на весь организм в целом. В связи с признанием универсальной роли усиления процессов свободнорадикального окисления в патогенезе различных заболеваний, в т.ч. инфекционных, в качестве вспомогательной терапии больным с бактериальными инфекциями могут назначаться антиоксиданты. Таким образом, в традиционную химиотерапевтическую схему «макроорганизм – антимикробное средство – микроорганизм» включается дополнительное лекарственное вещество, влияние которого на микроорганизм-возбудитель в подавляющем большинстве случаев не учитывается. Имеющиеся данные относительно влияния антиоксидантов на патогенные бактерии зачастую противоречат друг другу. Так, например, в середине XX века лечебный эффект аскорбиновой кислоты в дозах 500–1000 мг в сутки сопоставлялся с действием сульфаниламидных препаратов и антибиотиков [5]. В начале XXI века исследования M. Goswami et al. показали, что аскорбиновая кислота снижает чувствительность Escherichia coli к антибиотику стрептомицину [4].

Цель исследования – оценка влияния некоторых антиоксидантов на развитие штаммов Klebsiella pneumoniae.

Материалы и методы исследования

Работа выполнена на трех штаммах Klebsiella pneumoniae, депонированных на кафедре микробиологии с вирусологией Алтайского государственного медицинского университета:

1) контрольный штамм ATCC 13883 (далее – штамм № 1);

2) штамм, полученный из мокроты больного 55 лет, страдающего хронической обструктивной болезнью легких (далее – штамм № 2);

3) штамм, полученный из цервикального канала пациентки 26 лет, обратившейся в клинику для обследования (далее – штамм № 3).

Из указанных штаммов готовили суточные культуры инкубацией на скошенном агаре при 35 °С, которые использовали для приготовления инокулятов – бактериальных суспензий в 0,9 % растворе хлорида натрия с оптической плотностью 1,0 по Мак-Фарланду.

В эксперименте изучались эффекты четырех антиоксидантов восстановленного глутатиона, аскорбиновой кислоты, N-ацетилцистеина и метилэтилпиридинола. Глутатион выбран в качестве эталонного антиоксиданта, обеспечивающего защиту компонентов клеток млекопитающих от активных форм кислорода (например, гидроксильных и липидных радикалов, пероксинитрита и пероксида водорода) напрямую и косвенно, через ферментативные реакции.

Указанные антиоксиданты добавлялись в минеральную питательную среду М9 в концентрациях 0,25, 0,5, 1, 2 и 4 ммоль/л. После инокуляции бактериальной взвеси пробирки помещали в воздушный термостат и инкубировали в аэробных условиях в течение 24 часов. Для оценки развития штаммов использовали аппарат для определения оптической плотности бактериальных взвесей Densi-la-meter (LaChema, Чехия), измерения проводили через каждые 2 часа в первые 12 часов эксперимента и через 24 часа. Полученные данные сравнивали с данными контрольных инкубационных смесей, не содержащих антиоксиданты. Статистическую обработку результатов проводили с использованием непараметического критерия Манна−Уитни с помощью программы SigmaStat 3.5 (Systat Software, Inc., США), различия считали значимыми при р < 0,05 [1].

Результаты исследования и их обсуждение

Установлено, что глутатион увеличивает интенсивность развития всех изучаемых штаммов, что проявляется значимым приростом оптической плотности бактериальной биомассы уже через 4 часа после начала инкубации (табл. 2). При этом своего максимума показатель достигает уже через 6 часов (для сравнения: в контроле стационарная фаза в котором наступает лишь спустя 8 часов, табл. 1). Следует отметить, что влияние глутатиона на развитие всех изучаемых штаммов не имеет какой-либо зависимости от концентрации антиоксиданта.

Таблица 1

Развитие штаммов Klebsiella pneumoniae без добавления антиоксидантов

Часы инкубации

Оптическая плотность бактериальной биомассы, Me (25 %; 65 %) усл. ед.

Штамм № 1

Штамм № 2

Штамм № 3

2

0,2 (0,2; 0,2)

0,4 (0,4; 0,4)

0,4 (0,4; 0,4)

4

1,6 (1,5; 1,6)

1,9 (1,8; 1,9)

2,1 (2,0; 2,1)

6

4,8 (4,7; 4,9)

4,9 (4,9; 5,0)

5,1 (5,0; 5,1)

8

4,9 (4,8; 4,9)

5,3 (5,2; 5,3)

5,3 (5,3; 5,4)

10

4,8 (4,8; 4,9)

5,3 (5,2; 5,3)

5,3 (5,3; 5,4)

12

4,8 (4,8; 4,9)

5,2 (5,2; 5,3)

5,3 (5,2; 5,3)

24

4,7 (4,7; 4,8)

5,1 (5,0; 5,1)

5,1 (5,0; 5,1)

При анализе влияния аскорбиновой кислоты на развитие штаммов Klebsiella pneumoniae (табл. 3) видно, что указанный антиоксидант оказывает неоднозначные эффекты. Так, развитие штамма № 1 практически не претерпевает каких-либо закономерных изменений, в то время как для штамма № 2 отмечается антибактериальный эффект в высоких концентрациях аскорбиновый кислоты. Данный эффект более интенсивно проявляется в отношении штамма № 3 и имеет явную прямо пропорциональную зависимость от концентрации антиоксиданта. Учитывая вышеизложенное следует отметить, что чувствительность рассматриваемых штаммов к антибактериальному действию аскорбиновой кислоты индивидуальна.

Поскольку восстановленный глутатион и N-ацетилцистеин имеют некоторое структурное сходство, вполне ожидаемым стал профиль влияния последнего на развитие бактерий. Как и восстановленный глутатион, N-ацетилцистеин вызывает ускорение достижения максимума развития культуры, ограниченного возможностями питательной среды (табл. 4).

Из представленных в табл. 5 данных следует, что метилэтилпиридинол оказывает антибактериальное действие, сила которого прямо пропорциональна концентрации антиоксиданта.

Таблица 2

Влияние восстановленного глутатиона на развитие штаммов Klebsiella pneumoniae

Часы инкубации

Оптическая плотность бактериальной биомассы, Me(25 %;65 %) усл. ед.

0,25 мМ

0,5 мМ

1 мМ

2 мМ

4 мМ

Штамм № 1

2

0,3 (0,3; 0,3)*

0,3 (0,3; 0,3)*

0,3 (0,3; 0,3)*

0,3 (0,3; 0,3)*

0,3 (0,3; 0,3)*

4

2,1 (2,1; 2,1)*

2,2 (2,2; 2,3)*

2,1 (2,1; 2,1)*

2,0 (2,0; 2,2)*

2,0 (1,9; 2,0)*

6

5,1 (5,0; 5,1)*

5,1 (5,0; 5,1)*

4,9 (4,9; 5,1)*

5,0 (4,9; 5,0)*

5,0 (5,0; 5,0)*

8

5,0 (4,9; 5,0)

5,1 (5,0; 5,1)*

5,0 (4,9; 5,0)

4,9 (4,9; 5,0)

4,9 (4,8; 4,9)

10

4,9 (4,9; 4,9)

5,0 (4,9; 5,0)*

4,8 (4,8;4,9)

4,9 (4,8; 4,9)

4,7 (4,7; 4,7)*

12

4,9(4,8; 4,9)

4,9 (4,9; 4,9)*

4,8 (4,8; 4,9)

4,9 (4,7; 4,9)

4,7 (4,6; 4,8)

24

4,7 (4,7; 4,8)

4,7 (4,7; 4,8)*

4,7 (4,7; 4,7)

4,7 (4,7; 4,7)

4,5 (4,5; 4,7)*

Штамм № 2

2

0,5 (0,4; 0,5)

0,5 (0,4; 0,5)

0,5 (0,5; 0,5)*

0,5 (0,4; 0,5)

0,5 (0,5; 0,5)*

4

2,3 (2,1; 2,4)*

2,1 (2,1; 2,2)*

2,4 (2,3; 2,5)*

2,1 (2,1; 2,2)*

2,5 (2,4; 2,5)*

6

5,2 (5,2; 5,3)*

5,3 (5,2; 5,4)*

5,3 (5,3; 5,3)*

5,3 (5,3; 5,3)*

5,3 (5,2; 5,3)*

8

5,4 (5,3;5,4)*

5,5 (5,4; 5,5)*

5,4 (5,3; 5,5)*

5,5 (5,4; 5,5)*

5,3(5,3; 5,4)

10

5,4 (5,3; 5,5)*

5,4 (5,4; 5,5)*

5,3 (5,3; 5,5)

5,4 (5,3; 5,5)

5,3 (5,3; 5,4)

12

5,3 (5,3; 5,4)*

5,3 (5,3; 5,4)*

5,3 (5,3; 5,4)*

5,3 (5,1; 5,3)

5,2 (5,1; 5,3)

24

5,2 (5,1; 5,3)*

5,2 (5,1; 5,2)

5,1 (5,1; 5,2)

5,1 (5,0; 5,2)

5,1 (5,0; 5,1)

Штамм № 3

2

0,4 (0,4; 0,4)

0,4 (0,4; 0,4)

0,4 (0,4; 0,4)

0,4 (0,4; 0,4)

0,5 (0,5; 0,5)*

4

2,6 (2,6; 2,6)*

2,6 (2,6; 2,6)*

2,7 (2,7; 2,7)*

2,7 (2,7; 2,7)*

2,7 (2,7; 2,8)*

6

5,6 (5,6; 5,6)*

5,6 (5,6; 5,6)*

5,6 (5,6; 5,6)*

5,6 (5,6; 5,6)*

5,5(5,5; 5,6)*

8

5,6 (5,6; 5,6)*

5,6 (5,5; 5,6)*

5,5 (5,5; 5,5)*

5,5 (5,5; 5,5)*

5,4 (5,4; 5,5)*

10

5,5 (5,5; 5,5)*

5,5 (5,5; 5,5)*

5,5 (5,5; 5,5)*

5,5 (5,5; 5,5)*

5,4 (5,4; 5,5)

12

5,5 (5,5; 5,5)*

5,5 (5,4; 5,5)*

5,5 (5,4; 5,5)*

5,4 (5,4; 5,5)*

5,4 (5,3; 5,5)*

24

5,4 (5,4; 5,5)*

5,4 (5,3; 5,4)*

5,4 (5,4; 5,4)*

5,3 (5,2; 5,4)*

5,3 (5,2; 5,4)*

Примечание. * – значения, значимо отличающиеся от соответствующих данных контрольных групп, приведенных в табл. 1 (p < 0,05).

Таблица 3

Влияние аскорбиновой кислоты на развитие штаммов Klebsiella pneumoniae

Часы инкубации

Оптическая плотность бактериальной биомассы, Me(25 %;65 %) усл. ед.

0,25 мМ

0,5 мМ

1 мМ

2 мМ

4 мМ

Штамм № 1

2

0,2 (0,2; 0,3)

0,2 (0,2; 0,3)

0,2 (0,2; 0,3)

0,2 (0,2; 0,3)

0,3 (0,3; 0,3)*

4

1,5 (1,5;1,6)

1,6 (1,6; 1,6)

1,6 (1,6; 1,6)

1,6 (1,6; 1,7)

1,6 (1,5; 1,6)

6

4,9 (4,8; 4,9)

4,8 (4,8; 4,9)

5,0 (5,0; 5,0)*

5,0 (4,9; 5,1)*

5,0 (4,9; 5,1)

8

5,0 (4,9; 5,0)

4,9 (4,9; 5,0)

4,9 (4,9; 5,0)

4,9 (4,8; 5,0)

4,8 (4,8; 4,8)

10

4,9 (4,8; 4,9)

4,8 (4,8; 4,9)

4,8 (4,8; 4,9)

4,7 (4,7; 4,8)

4,7 (4,6; 4,8)

12

4,8 (4,8; 4,9)

4,9 (4,8; 4,9)

4,8 (4,8; 4,9)

4,7 (4,7; 4,8)

4,7 (4,7; 4,8)

24

4,7 (4,7; 4,8)

4,8 (4,8; 4,9)

4,8 (4,7; 4,9)

4,6 (4,6; 4,7)

4,7 (4,6; 4,8)

Штамм № 2

2

0,4 (0,4;0,5)

0,4 (0,4; 0,5)

0,4 (0,4; 0,5)

0,4 (0,4; 0,4)

0,4 (0,4; 0,4)

4

1,9 (1,9; 2,0)

1,9 (1,9; 1,9)

2,0 (1,9; 2,0)*

2,0 (1,9; 2,0)*

1,9 (1,9; 1,9)

6

5,0 (4,9; 5,0)

4,9 (4,9; 5,0)

4,8 (4,8; 4,9)

4,5 (4,5; 4,6)*

4,6 (4,5; 4,6)*

8

5,3 (5,2; 5,3)

5,3 (5,3; 5,4)

5,2 (5,2; 5,3)

5,3 (5,2; 5,3)

5,1 (5,1; 5,2)*

10

5,2 (5,2; 5,3)

5,3 (5,3; 5,3)

5,2 (5,2; 5,3)

5,2 (5,2; 5,3)

5,1 (5,1; 5,2)*

12

5,2 (5,2;5,2)

5,2 (5,2; 5,2)

5,2 (5,1; 5,2)

5,2 (5,1; 5,2)

5,1 (5,1; 5,1)*

24

5,1 (5,1; 5,2)

5,0 (5,0; 5,1)

5,1 (5,1; 5,2)

5,1 (5,0; 5,1)

5,0 (5,0; 5,1)

Штамм № 3

2

0,4 (0,4; 0,4)

0,4 (0,4; 0,4)

0,4 (0,4; 0,4)

0,4 (0,4; 0,4)

0,4 (0,4; 0,4)

4

2,0 (1,9; 2,0)

1,9 (1,9; 2,0)

1,9 (1,9; 1,9)*

1,9 (1,8; 1,9)*

1,8 (1,8; 1,9)*

6

5,1 (5,0; 5,1)

5,0 (5,0; 5,0)

5,0 (4,9; 5,1)

4,7 (4,7; 4,7)*

4,6 (4,6; 4,6)*

8

5,3 (5,3; 5,4)

5,3 (5,3; 5,4)

5,2 (5,2; 5,2)*

5,1 (5,1; 5,1)*

5,1 (5,1; 5,1)*

10

5,3 (5,3; 5,3)*

5,2 (5,2; 5,3)

5,2 (5,2; 5,2)*

5,1 (5,1; 5,1)*

5,0 (5,0; 5,1)*

12

5,2 (5,2; 5,2)

5,2 (5,2; 5,2)

5,2 (5,1; 5,2)

5,1 (5,1; 5,1)*

5,0 (5,0; 5,0)*

24

5,1 (5,0; 5,1)

5,1 (5,1; 5,1)

5,0 (5,0; 5,1)

5,0 (5,0; 5,0)*

5,0 (4,9; 5,0)*

Примечание. * – значения, значимо отличающиеся от соответствующих данных контрольных групп, приведенных в табл. 1 (p < 0,05).

Таблица 4

Влияние N-ацетилцистеина на развитие штаммов Klebsiella pneumoniae

Часы инкубации

Оптическая плотность бактериальной биомассы, Me(25 %;65 %) усл. ед.

0,25 мМ

0,5 мМ

1 мМ

2 мМ

4 мМ

Штамм № 1

2

0,3 (0,3; 0,3)*

0,3 (0,3; 0,3)*

0,3 (0,3; 0,3)*

0,3 (0,3; 0,3)*

0,3 (0,3; 0,3)*

4

1,7 (1,7; 1,7)*

1,8 (1,7; 1,8)*

1,7 (1,7; 1,7)*

2,0 (2,0; 2,0)*

2,1 (2,0; 2,1)*

6

5,0 (4,9; 5,0)*

4,9 (4,9; 5,0)

5,0 (5,0; 5,1)*

4,9 (4,9; 5,0)

4,9 (4,9; 5,0)

8

4,9 (4,9; 4,9)

4,8 (4,8; 4,9)

5,0 (4,8; 5,0)

4,8 (4,8; 4,8)

4,8 (4,8; 4,9)

10

4,9 (4,8; 4,9)

4,9 (4,9; 5,0)

4,9 (4,9; 5,1)

4,9 (4,7; 4,9)

4,7 (4,7; 4,8)

12

4,8 (4,8; 4,9)

4,9 (4,9; 4,9)

4,9 (4,9; 5,0)

4,8 (4,7; 4,8)

4,8 (4,7; 4,8)

24

4,7 (4,7; 4,7)

4,7 (4,7; 4,8)

4,7 (4,7; 4,8)

4,7 (4,6; 4,7)

4,8 (4,7; 4,8)

Штамм № 2

2

0,5 (0,5; 0,5)*

0,5 (0,5; 0,5)*

0,5 (0,5; 0,5)*

0,5 (0,5; 0,5)*

0,5 (0,5; 0,5)

4

2,1 (2,0; 2,1)*

2,3 (2,3; 2,4)*

2,2 (2,1; 2,2)*

2,2 (2,2; 2,3)*

2,2 (2,2; 2,3)

6

5,1 (5,1; 5,1)*

5,1 (5,1; 5,1)*

5,2 (5,1; 5,2)*

5,0 (5,0; 5,1)*

5,1 (5,0; 5,1)

8

5,3 (5,2; 5,3)

5,2 (5,2; 5,3)

5,3 (5,2; 5,3)

5,2 (5,2; 5,3)

5,3 (5,2; 5,3)

10

5,2 (5,2; 5,3)

5,2 (5,2; 5,3)

5,2 (5,2; 5,3)

5,2 (5,2; 5,3)

5,3 (5,2; 5,3)

12

5,1 (5,1; 5,2)

5,1 (5,0; 5,1)*

5,1 (5,1; 5,2)

5,1 (5,0; 5,1)*

5,1 (5,1; 5,2)

24

5,1 (5,0; 5,1)

5,0 (5,0; 5,0)

5,0 (5,0; 5,1)

5,0 (5,0; 5,1)

5,0 (5,0; 5,1)

Штамм № 3

2

0,4 (0,4; 0,4)

0,4 (0,4; 0,5)

0,4 (0,4; 0,4)

0,4 (0,4; 0,4)

0,5 (0,4; 0,5)

4

2,4 (2,3; 2,4)*

2,4 (2,4; 2,5)*

2,4 (2,4; 2,5)*

2,3 (2,3; 2,4)*

2,5 (2,4; 2,5)*

6

5,3 (5,2; 5,3)*

5,3 (5,3; 5,3)*

5,2 (5,2; 5,3)*

5,4 (5,3; 5,4)*

5,3 (5,3; 5,4)*

8

5,4 (5,4; 5,5)

5,3 (5,3; 5,3)

5,4 (5,3; 5,4)

5,4 (5,3; 5,4)

5,4 (5,3; 5,4)

10

5,3 (5,3; 5,4)

5,3 (5,3; 5,3)

5,3 (5,3; 5,3)

5,3 (5,3; 5,3)

5,3 (5,3; 5,4)

12

5,3 (5,2; 5,3)

5,3 (5,3; 5,3)

5,3 (5,2; 5,4)

5,3 (5,3; 5,3)

5,3 (5,3; 5,3)*

24

5,2 (5,2; 5,2)*

5,0 (5,0; 5,1)

5,2 (5,1; 5,2)*

5,2 (5,2; 5,3)*

5,3 (5,3; 5,4)*

Примечание. * – значения, значимо отличающиеся от соответствующих данных контрольных групп, приведенных в табл. 1 (p < 0,05).

Таблица 5

Влияние метилэтилпиридинола на развитие штаммов Klebsiella pneumoniae

Часы инкубации

Оптическая плотность бактериальной биомассы, Me(25 %;65 %) усл. ед.*

0,25 мМ

0,5 мМ

1 мМ

2 мМ

4 мМ

Штамм № 1

2

0,3 (0,2; 0,3)

0,3 (0,3; 0,3)*

0,2 (0,2; 0,3)

0,2 (0,2; 0,2)

0,2 (0,2; 0,3)

4

1,7 (1,7; 1,7)*

1,8 (1,8; 1,9)*

1,7 (1,7; 1,7)*

1,6 (1,6; 1,6)

1,5 (1,4; 1,5)*

6

4,9 (4,8; 4,9)

4,8 (4,7; 4,8)

4,7 (4,6; 4,8)

4,5 (4,4; 4,6)*

4,3 (4,3; 4,4)*

8

4,7 (4,7; 4,7)*

4,8 (4,7; 4,9)

4,7 (4,6; 4,7)*

4,6 (4,5; 4,6)*

4,4 (4,3; 4,4)*

10

4,8 (4,7; 4,8)

4,7 (4,7; 4,7)*

4,7 (4,6; 4,7)*

4,5 (4,5; 4,5)*

4,4 (4,4; 4,4)*

12

4,7 (4,7; 4,7)*

4,7 (4,6; 4,7)*

4,6 (4,5; 4,6)*

4,5 (4,5; 4,5)*

4,4 (4,3; 4,4)*

24

4,6 (4,6; 4,7)

4,6 (4,6; 4,7)

4,5 (4,3; 4,5)*

4,5 (4,4; 4,5)*

4,4 (4,3; 4,4)*

Штамм № 2

2

0,4 (0,4; 0,5)

0,4 (0,4; 0,4)

0,4 (0,4; 0,4)

0,4 (0,4; 0,4)

0,4 (0,4; 0,4)

4

1,8 (1,8; 1,9)

1,7 (1,6; 1,7)*

1,6 (1,6; 1,6)*

1,4 (1,4; 1,5)*

1,3 (1,2; 1,3)*

6

4,7 (4,7; 4,9)*

4,6 (4,6; 4,6)*

4,6 (4,5; 4,6)*

4,2 (4,1; 4,2)*

3,9 (3,5; 3,9)*

8

5,2 (5,1; 5,2)*

5,1 (5,0; 5,1)*

5,1 (5,0; 5,1)*

4,9 (4,9; 4,9)*

4,7 (4,7; 4,8)*

10

5,1 (5,1; 5,2)*

5,1 (5,1; 5,2)*

5,0 (5,0; 5,1)*

4,9 (4,9; 4,9)*

4,7 (4,6; 4,8)*

12

5,0 (5,0; 5,1)*

4,9 (4,8; 4,9)*

4,9 (4,8; 4,9)*

4,7 (4,6; 4,8)*

4,5 (4,4; 4,6)*

24

5,0 (4,9; 5,0)*

4,8 (4,8; 5,0)*

4,8 (4,7; 4,8)*

4,6 (4,5; 4,7)*

4,3 (4,2; 4,4)*

Штамм № 3

2

0,4 (0,4; 0,4)

0,4 (0,4; 0,4)

0,4 (0,4; 0,4)

0,4 (0,4; 0,4)

0,3 (0,3; 0,4)

4

2,3 (2,2; 2,3)*

2,0 (2,0; 2,2)

2,1 (2,1; 2,1)

1,7 (1,4; 1,8)*

1,6 (1,6; 1,6)*

6

5,2 (5,2; 5,2)*

5,1 (5,0; 5,2)

5,1 (5,1; 5,1)

4,5 (4,3; 4,7)*

4,3 (4,3; 4,4)*

8

5,3 (5,3; 5,4)

5,2 (5,2; 5,3)*

5,2 (5,2; 5,2)*

5,0 (5,0; 5,1)*

4,9 (4,9; 4,9)*

10

5,3 (5,2; 5,3)

5,2 (5,2; 5,2)*

5,2 (5,2; 5,2)*

5,0 (4,9; 5,0)*

4,8 (4,8; 4,8)*

12

5,3 (5,2; 5,3)

5,2 (5,2; 5,3)

5,1 (5,1; 5,2)*

5,0 (4,9; 5,0)*

4,8 (4,8; 4,8)*

24

5,1 (5,1; 5,2)

5,1 (5,1; 5,2)

5,1 (5,0; 5,1)

4,8 (4,8; 4,9)*

4,7 (4,6; 4,7)*

Примечание. * – значения, значимо отличающиеся от соответствующих данных контрольных групп, приведенных в табл. 1 (p < 0,05).

Выводы

В результате исследования установлено, что аскорбиновая кислота и особенно метилэтилпиридинол проявляют антибактериальные свойства в отношении Klebsiella pneumoniae, степень выраженности которых находятся в прямой зависимости от концентрации антиоксидантов. В присутствии восстановленного глутатиона происходит усиление развития штаммов микроорганизма, при этом сила указанного эффекта не имеет явной зависимости от концентрации антиоксиданта. N-ацетилцистеин оказывает аналогичное, но менее выраженное действие. Приведенные данные свидетельствуют о том, что наличие антиоксидантных свойств у соединения не позволяет однозначно судить о его влиянии на развитие бактерий, в частности, на штаммы Klebsiella pneumoniae. Кроме того, следует отметить, что как анти-, так и пробактериальное действие изученных соединений зависят не только от их концентрации, но также от индивидуальной чувствительности конкретного штамма данного вида бактерии. Полученные данные следует учитывать при лечении больных с инфекционными заболеваниями.

Рецензенты:

Карбышева Н.В., д.м.н., профессор кафедры инфекционных болезней, АГМУ, г. Барнаул;

Смирнов И.В., д.м.н., зав. кафедрой фармакогнозии и ботаники, АГМУ, г. Барнаул.

Работа поступила в редакцию 18.01.2013.


Библиографическая ссылка

Мирошниченко А.Г., Брюханов В.М., Бутакова Л.Ю., Госсен И.Е., Перфильев В.Ю., Смирнов П.В. ВЛИЯНИЕ АНТИОКСИДАНТОВ НА РАЗВИТИЕ ШТАММОВ KLEBSIELLA PNEUMONIAE // Фундаментальные исследования. – 2013. – № 2-1. – С. 121-125;
URL: https://fundamental-research.ru/ru/article/view?id=31067 (дата обращения: 21.09.2021).

Предлагаем вашему вниманию журналы, издающиеся в издательстве «Академия Естествознания»
(Высокий импакт-фактор РИНЦ, тематика журналов охватывает все научные направления)

«Фундаментальные исследования» список ВАК ИФ РИНЦ = 1.074