Scientific journal
Fundamental research
ISSN 1812-7339
"Перечень" ВАК
ИФ РИНЦ = 1,674

ANTIOXIDANTS AS THE CORRECTORS OF DAPSONE-INDUCED CHANGES OF THE INDICATORS OF IMMUNE SYSTEM

Luzhnova S.A. 1 Yasenyavskaya A.L. 2 Samotrueva M.A. 2
1 Leprosy Research Institute
2 Astrakhan state medical Academy
In our experimental work on 360 white nonlinear male rats of 3 age groups the effect of dapsone on the humoral and cellular immunogenesis, processes of proliferation in organs of immune system (thymus, spleen) and blood formula were investigated. The formation immunnosupressivnyh disorders manifested by inhibition of antibody production, cellular reaction immunogenesis, and proliferative processes: reducing the number of thymocytes, splenocytes, the total number of peripheral blood leukocytes; change leukocyte. The formation of immunnosupression is manifested by inhibition of antibody production, cellular reaction of immunogenesis, and proliferative processes: reducing the number of thymocytes, splenocytes, the total number of peripheral blood leukocytes; change of leukocyte formula. Particularly strong adverse effects of the dapsone are in the older age group. Antioxidants α-tocopherol and emoksipin were used in combination with dapsone. Antioxidants prevent the formation of adverse reactions in the immune system. These data indicate that antioxidants have expressed immunomodulatory properties and can be used to optimize therapy of dapsone.
dapsone
alpha-tocopherol acetate
emoxipine
immune system
correction
1. Astahova A.V., Lepahin V.K. Neblagoprijatnye pobochnye reakcii i kontrol› bezopasnosti lekarstvennyh sredstv [Adverse collateral reactions and control of safety of medicines]. Мoscow, KogitoCentr, 2004. 200 p.
2. Bulgakova O.S. Immunitet i razlichnye stadii stressornogo vozdejstvija [Immunity and the various stages of stress]. Uspehi sovremennogo estestvoznanija. 2011. no. 4. pp. 31–35.
3. Pershin, S.B., Konchugova T.V. Stress i immunitet [Stress and immunity]. M.: Kron-press, 1996. 160 p.
4. Profilaktika neblagoprijatnyh pobochnyh reakcij [Prevention of adverse drug reactions] pod obshh. red. prof. N.V. Jurgelja, akad. RAMN V.G. Kukesa. M.: GJEOTAR-Media, 2009. 450 p.
5. Rukovodstvo po laboratornym zhivotnym i al›ternativnym modeljam v biomedicinskih tehnologijah [Guidance on laboratory animals and alternative models in biomedical technology] pod obshh. red. N.N. Karkishhenko, S.V. Gracheva. М., 2010. 345 p.
6. Fedorova O.V., Krajushkina N.G., Shefer E.G. [i dr.] Poststressovaja moduljacija organov immunogeneza [Poststress modulation of immunogenesis] Vestnik Volgogradskogo gosudarstvennogo medicinskogo universiteta 2010. nо. 3. pp. 8–12.
7. Haitov R.M., Gushhin I.S., Pinegin B.V., Zebrov A.I. Metodicheskie ukazanija po izucheniju immunotropnoj aktivnosti farmakologicheskih veshhestv [Methodological guidelines for the study of immunotropic activity of pharmacological substances] Rukovodstvo po jeksperimental›nomu doklinicheskomu izucheniju novyh farmakologicheskih veshhestv. М., 2005. рр. 501–514.
8. Ghu G.I., Stiller M.G. Dapsone and sulfones in dermatology overview and update. Journal of the American Academy of dermatology. 2001. Vol. 45. no. 3. pp. 420-434.
9. Ichiki Y. Simultaneous cellular and humoral immune response against mutated p53 in a patient with lung cancer J. Immunol. 2004. Vol. 72. no. 8. pp. 4844–4850.
10. Directive 2004/9/EC of the European parliament and of the council of 11 February 2004 on the inspection and verification of good laboratory practice (GLP). Official Journal of the European Union 20.2.2004. pp. 29–43.

В последние десятилетия большое внимание уделяется повышению безопасности фармакотерапии различных заболеваний как при создании новых лекарственных средств, так и в процессе клинического использования препаратов в виде оптимизации их применения [1; 4].

Иммунная и кроветворная системы являются одними из основных индикаторов состояния гомеостаза организма [9]. Всё многообразие иммунных реакций направлено на поддержание физиологического равновесия, что и объясняет высокую чувствительность иммунной системы к различным факторам, в частности влиянию лекарственных средств. Экспериментальные данные ряда исследователей свидетельствуют, что вид, сила и продолжительность воздействия, а также исходное состояние организма определяют направленность иммунной реакции от глубокой иммуносупрессии до выраженной иммуностимуляции, оказывая при этом на организм иммунопротективное, иммунорегуляторное или иммунопатологическое действие [3, 6, 2].

Одно из центральных мест в развитии медикаментозных нарушений иммунного реагирования занимают противомикробные препараты. Более шестидесяти лет в качестве основного препарата для терапии лепры используют дапсон [8], также успешно применяющийся и для лечения и профилактики ряда других заболеваний, таких как герпетиформный дерматит Дюринга, туберкулез, малярия, пневмоцистная пневмония, токсоплазмоз, кожный лейшманиоз, мицетома, провоцируемая актиномицетами; ревматоидный артрит, субкорнеальный дерматоз и некоторых других.

Несмотря на высокую фармакологическую активность, препарат обладает рядом негативных эффектов, обусловленных формированием в ходе метаболизма гидроксиламин-производных. Наряду с нарушениями со стороны сердечно-сосудистой системы, кожных покровов, органов ЖКТ, дапсон нередко проявляет и гематотоксическое действие, вызывая поражения системы крови (дозозависимый гемолиз с понижением уровня гемоглобина и повышением числа ретикулоцитов, гемолитическая анемия, метгемоглобинемия, гипопластическая анемия, агранулоцитоз) [8]. Высокий процент возникновения перечисленных выше нежелательных дапсон-индуцированных лекарственных реакций требует активного поиска оптимальных способов их коррекции.

Целью нашей работы явилось исследование возможных корригирующих свойств известного биорегулятора – альфа-токоферола и синтетического антиоксиданта – эмоксипина – в отношении показателей иммунореактивности у лабораторных животных, получающих дапсон.

Материалы и методы исследования

Исследование проведено на 360 белых нелинейных крысах-самцах 3-х возрастных групп: 1,5–2 мес. (75–120 г), 6–8 мес. (210–280 г), 20–24 мес. (260–350 г). Животных содержали в стандартных условиях вивария при естественном освещении. Все крысы были синхронизированы по питанию при свободном доступе к воде.

Проведено три серии экспериментов в весенне-летний период. Животные каждой серии были разделены на группы по 10 особей в каждой: 1-ю составляли контрольные крысы, получавшие эквиобъем дистиллированной воды; 2-ю – особи, получавшие внутрижелудочно дапсон (фирма «Novartis») в дозе 25 мг/кг в течение 14 дней; 3-ю – животные, получавшие внутрижелудочно дапсон в дозе 25 мг/кг в комбинации с α-токоферолом per os в дозе 5 мг/кг в течение 14 дней, 4-ю группу – животные, получавшие внутрижелудочно дапсон в дозе 25 мг/кг и эмоксипин в/м в дозе 5 мг/кг в течение 14 дней.

По завершению эксперимента животных забивали под хлороформным наркозом. Забирали кровь, органы, лапы.

Все манипуляции с животными осуществляли согласно Международным правилам GLP [5, 10].

Иммунный статус животных оценивали на основании стандартных иммунофармакологических тестов: реакции гиперчувствительности замедленного типа (РГЗТ) с определением индекса реакции (I-серия), реакции прямой гемагглютинации (РПГА) с определением титра антител (II-серия), изучения лейкоцитарной формулы, определения массы и клеточности иммунокомпетентных органов (III-серия) [7].

Статистическую обработку результатов исследования осуществляли с помощью пакетов программ: Microsoft Office Excel 2007 (Microsoft, США), BIOSTAT 2008 Professional 5.1.3.1. с использованием t-критерия Стьюдента с поправкой Бонферрони.

Результаты исследования и их обсуждение

Анализ иммунореактивности показал, что на фоне применения дапсона происходит подавление клеточно-опосредованной РГЗТ и процесса антителообразования только у старых животных: индекс РГЗТ и титр антител в РПГА снизились на 20 % (p < 0,05) и 30 % (p < 0,05) соответственно. В остальных возрастных группах изменений не выявлено (табл. 1).

У животных, получавших в комбинации с дапсоном α-токоферол, статистически значимые изменения были зафиксированы только в старшей возрастной группе. На фоне введения α-токоферола отмечалось повышение титра антиэритроцитарных антител в сравнении с особями, получавшими только дапсон, на 25 % (p < 0,05), ИР ГЗТ – на 20 % (p < 0,05). У молодых и зрелых животных отмечалась лишь тенденция к активации иммунореактивности (табл. 1).

Воздействие эмоксипина на фоне применения дапсона имело по направленности сходный характер, но статистически значимыми изменения не являлись (табл. 1).

В процессе исследования было также установлено, что при воздействии дапсона у молодых и зрелых животных отмечаются тенденции к угнетению процессов пролиферации в иммунокомпетентных органах, о чём свидетельствовало снижение массы селезенки и тимуса в среднем на 15 % (p > 0,05). У старых крыс данные изменения были более выражены (p < 0,05): количество спленоцитов и тимоцитов у молодых и зрелых животных уменьшилось относительно контроля на 10 % (p > 0,05), у старых крыс-самцов в среднем на 25 % (p < 0,05) (табл. 2).

Применяемые антиоксиданты в условиях дапсон-индуцированных нарушений (табл. 2) оказывали влияние на активность пролиферативных процессов, но статистически значимым это влияние было лишь у старых животных (p < 0,05). Воздействие α-токоферола в сравнении с эмоксипином было более выраженным.

При оценке показателей лейкопоэза в условиях введения дапсона выявлено снижение общего количества лейкоцитов в среднем на 20 % (p < 0,05) во всех возрастных группах. В лейкоцитарной формуле отмечалось достоверное снижение эозинофилов более чем на 40 % у молодых и зрелых (p < 0,05, p < 0,001) и на 75 % (p < 0,001) у старых животных, сегментоядерных нейтрофилов в среднем на 25 % у молодых и зрелых особей (p > 0,05) и более чем на 40 % (p < 0,05) у старых крыс, также следует отметить статистически значимое увеличение палочкоядерных форм нейтрофилов: у молодых на 60 %, у зрелых в 1,5 раза и у старых животных почти на 100 % (табл. 3).

Таблица 1

Влияние антиоксидантов на формирование РГЗТ и РПГА у разновозрастных крыс-самцов на фоне применения дапсона

Группы (n = 10)

Показатели (M ± m)

Контроль

Дапсон (25 мг/кг)

Дапсон (25 мг/кг) + α-ТФ (5 мг/кг)

Дапсон (25 мг/кг) + Э (5 мг/кг)

Крысы-самцы 1,5–2 мес.

ИР ГЗТ, %

10,21 ± 0,7

10,11 ± 0,9

12,28 ± 1,1

11,84 ± 1,0

Титр антител в РПГА, lg

1,55 ± 0,1

1,50 ± 0,09

1,67 ± 0,1

1,59 ± 0,1

Крысы-самцы 6–8 мес.

ИР ГЗТ, %

11,78 ± 1,1

11,70 ± 0,8

12,01 ± 1,0

12,87 ± 1,1

Титр антител в РПГА, lg

1,47 ± 0,9

1,42 ± 0,9

1,56 ± 0,1

1,61 ± 0,1

Крысы-самцы 20 – 24 мес.

ИР ГЗТ, %

21,63 ± 2,2

16,82 ± 1,0*

20,41 ± 1,0#

19,81 ± 1,2

Титр антител в РПГА, lg

1,90 ± 0,2

1,29 ± 0,2*

1,62 ± 0,1#

1,57 ± 0,1

Примечания: * – p < 0,05 – относительно контроля; # – p < 0,05 – относительно животных, получавших дапсон (t-критерий Стьюдента с поправкой Бонферрони для множественных сравнений); α-ТФ – α-токоферол, Э – эмоксипин.

Таблица 2

Влияние антиоксидантов на массу и клеточность иммунокомпетентных органов разновозрастных крыс-самцов на фоне применения дапсона

Показатели (M ± m)

Группы (n = 10)

Масса селезенки, мг

Кол-во спленоцитов в 1 мг органа, ∙105

Масса тимуса, мг

Кол-во тимоцитов в 1 мг органа, ∙105

Крысы-самцы 1,5–2 мес.

Контроль

367,1 ± 19,7

126,2 ± 7,3

110,3 ± 7,8

42,3 ± 3,4

Дапсон (25 мг/кг)

310,1 ± 20,8

110,3 ± 6,5

95,4 ± 6,7

39,1 ± 2,7

Дапсон (25 мг/кг) + α-ТФ (5мг/кг)

359,6 ± 19,1

120,3 ± 7,8

101,2 ± 5,9

41,4 ± 2,8

Дапсон (25 мг/кг) + Э (5 мг/кг)

352,1 ± 18,2

116,2 ± 6,4

98,6 ± 5,2

39,7 ± 3,1

Крысы-самцы 6–8 мес.

Контроль

377,1 ± 19,3

115,4 ± 6,3

73,4 ± 7,6

32,5 ± 2,8

Дапсон (25 мг/кг)

322,8 ± 19,5

99,2 ± 5,5

65,3 ± 5,6

30,3 ± 2,7

Дапсон (25 мг/кг) + α-ТФ (5мг/кг)

368,4 ± 18,1

110,1 ± 6,8

69,7 ± 6,1

31,3 ± 2,2

Дапсон (25 мг/кг) + Э (5 мг/кг)

359,2 ± 17,6

106,2 ± 6,4

68,3 ± 5,4

29,9 ± 2,6

Крысы-самцы 20–24 мес.

Контроль

352,4 ± 17,3

73,2 ± 5,3

29,4 ± 3,4

29,5 ± 2,5

Дапсон (25 мг/кг)

292,1 ± 16,5*

50,3 ± 4,5**

20,3 ± 2,7*

21,6 ± 2,7*

Дапсон (25 мг/кг) + α-ТФ (5мг/кг)

348,6 ± 18,1#

67,4 ± 5,8#

27,2 ± 2,1#

31,2 ± 2,3#

Дапсон (25 мг/кг) + Э (5 мг/кг)

342,1 ± 18,6#

60,1 ± 6,1

24,7 ± 2,2

30,4 ± 2,6#

Примечания: * – p < 0,05; ** – p < 0,01 – относительно контроля; # – p < 0,05 – относительно животных, получавших дапсон (t-критерий Стьюдента с поправкой Бонферрони для множественных сравнений); α-ТФ – α-токоферол, Э – эмоксипин.

При комбинированном применении дапсона как с α-токоферолом, так и эмоксипином количество лейкоцитов оставалось в пределах «нормы». Следует отметить, что более выраженное действие оказал аналог природного антиоксиданта – α-токоферол. Анализ лейкограммы показал, что применение α-токоферола совместно с дапсоном способствовало устранению ингибирующего влияния последнего: количество эозинофилов у молодых особей практически не отличалось от показателей контрольной группы, у зрелых было выше относительно группы, получавшей только дапсон, – на 35 % (p < 0,001), у старых крыс – более чем в 3,5 раза (p < 0,001). Под действием антиоксиданта уменьшалось негативное влияние и на сегментоядерное звено: количество нейтрофилов у молодых и зрелых крыс в этих группах по сравнению с «дапсоном» в среднем было выше на 25 % (p > 0,05), у старых животных на 55 % (p < 0,001). Кроме того, применение α-токоферола сопровождалось снижением палочкоядерных форм нейтрофилов. При применении эмоксипина выявлены идентичные тенденции, но несколько менее выраженные (табл. 3).

Таблица 3

Влияние антиоксидантов на показатели лейкоцитарной формулы животных на фоне применения дапсона

Группы (n = 10)

Показатели (M ± m)

Контроль

Дапсон (25 мг/кг)

Дапсон (25 мг/кг) + α-ТФ (5 мг/кг)

Дапсон (25 мг/кг) + Э (5 мг/кг)

Крысы-самцы 1,5–2 мес.

Общее количество лейкоцитов, ∙109/л

12,8 ± 0,9

10,2 ± 0,8*

12,7 ± 0,9#

12,1 ± 1,0

Эозинофилы, %

2,5 ± 0,4

1,4 ± 0,05*

2,7 ± 0,3##

2,3 ± 0,4#

Палочкоядерные нейтрофилы, %

6,0 ± 0,7

9,5 ± 0,2***

5,1 ± 0,5###

7,2 ± 0,6##

Сегментоядерные нейтрофилы, %

11,0 ± 1,2

7,6 ± 2,1

9,7 ± 0,8

8,9 ± 0,9

Лимфоциты, %

70,3 ± 2,6

74,1 ± 3,1

73,4 ± 2,1

74,0 ± 2,9

Моноциты, %

10,4 ± 1,2

7,1 ± 1,3

8,9 ± 2,8

8,1 ± 2,7

Крысы-самцы 6–8 мес.

Общее количество лейкоцитов, ∙109/л

13,1 ± 1,0

10,1 ± 0,9*

12,5 ± 0,8#

12,0 ± 0,9

Эозинофилы, %

10,2 ± 0,2

6,2 ± 0,2***

8,4 ± 0,3###

7,7 ± 0,4##

Палочкоядерные нейтрофилы, %

3,7 ± 1,2

9,4 ± 1,4*

4,9 ± 1,4#

7,4 ± 1,5

Сегментоядерные нейтрофилы, %

37,4 ± 3,2

28,8 ± 2,9

35,0 ± 2,4

32,1 ± 1,8

Лимфоциты, %

39,7 ± 3,2

48,1 ± 2,8

43,3 ± 1,3

44,8 ± 1,7

Моноциты, %

8,9 ± 1,5

7,3 ± 1,6

8,1 ± 1,8

8,0 ± 1,9

Крысы-самцы 20–24 мес.

Общее количество лейкоцитов, ∙109/л

13,5 ± 1,1

10,7 ± 0,8*

13,2 ± 0,9#

12,6 ± 0,9

Эозинофилы, %

4,6 ± 0,05

1,2 ± 0,05***

4,3 ± 0,06###

3,6 ± 0,5###

Палочкоядерные нейтрофилы, %

4,2 ± 0,5

8,3 ± 0,2***

3,5 ± 0,2###

5,9 ± 0,7##

Сегментоядерные нейтрофилы, %

28,3 ± 2,4

16,4 ± 1,3**

25,5 ± 1,1###

21,9 ± 2,2#

Лимфоциты, %

53,5 ± 4,5

68,3 ± 5,9

58,5 ± 2,3

56,4 ± 3,7

Моноциты, %

9,6 ± 1,7

5,9 ± 0,9

8,2 ± 0,8

7,8 ± 0,7

Примечания: * – p < 0,05; ** – p < 0,01; *** p < 0,001 – относительно контроля; # – p < 0,05; ## – p < 0,01; ### – p < 0,001 – относительно животных, получавших дапсон (t-критерий Стьюдента с поправкой Бонферрони для множественных сравнений); α-ТФ – α-токоферол; Э – эмоксипин.

Выводы

Таким образом, α-токоферол и эмоксипин, применяемые на фоне введения дапсона, влияют на показатели гуморального и клеточного звена иммунитета, пролиферативные процессы в иммунокомпетентных органах и показатели лейкоцитарной формулы, оказывая корригирующее действие, более выраженное в позднем возрасте.

На основании полученных данных может быть разработан способ коррекции дапсон-индуцированных нарушений для оптимизации терапии дапсоном в дерматологии, в том числе в лепрологии, а также при лечении ряда инфекционных болезней (малярии, пневмоцистной пневмонии и др.).

Рецензенты:

Тризно Н.Н., д.м.н., заведующий кафедрой патологической физиологии, ГБОУ ВПО «Астраханская государственная медицинская академия» Минздрава России, г. Астрахань;

Котельников А.В., д.б.н., профессор кафедры «Гидробиология и общая экология», ФГБОУ ВПО «Астраханский технический университет», г. Астрахань.

Работа поступила в редакцию 02.12.2014.