Научный журнал

Фундаментальные исследования

ISSN 1812-7339

"Перечень" ВАК

ИФ РИНЦ = 1,674

• Авторы
• Резюме
• Файлы
• Ключевые слова
• Литература

Уланова Т.С. 1 Карнажицкая Т.Д. 1 Заверненкова Е.О. 1

---

1 ФБУН «ФНЦ медико-профилактических технологий управления рисками здоровью населения»

Проведен аналитический обзор научной литературы по определению микроколичеств акролеина в биологических средах различными инструментальными методами. Установлено, что с целью осуществления биомониторинговых исследований анализ свободного и связанного акролеина проводится в моче, тканях, цельной крови, плазме и сыворотке. Для определения акролеина в биологических средах в настоящее время в основном используют методы высокоэффективной жидкостной и газовой хроматографии. Высокая реакционная способность свободного акролеина определяет специфику подготовки проб. В зависимости от способа пробоподготовки матрицы анализируют непосредственно акролеин или его производное. Предпочтение отдается высокоэффективной жидкостной хроматографии с флуориметрическим или ультрафиолетовым детектором в сочетании с реакцией дериватизации. Высокая чувствительность определения обеспечивается флуориметрическим детектированием за счет способности производных акролеина к флуоресценции.

Статья в формате PDF

318 KB

акролеин

биосреды

методы анализа

дериватизация

газовая и жидкостная хроматография

1. Акролеин // Серия «Научные обзоры советской литературы по токсичности и опасности химических веществ» / под ред. Н.Ф. Измерова. – М., 1984. – № 50. – 15 с.

2. Онищенко Г.Г., Зайцева Н.В., Уланова Т.С. Контроль содержания химических соединений и элементов в биологических средах. – Пермь: Книжный формат, 2011. – 520 с.

3. Филов В.А., Тиунов Л.А. Вредные химические вещества. Галоген- и кислородсодержащие органические соединения: справочник. – СПб.: Химия, 1994. – 286 с.

4. Blair E. Miller, and Neil D. Danielson. Derivatization of vinyl aldehydes with anthrone prior to high-performance liquid chromatography with fluorometric detection // Anal. Chem. – 1988. – 60 (7). – 622–626 р.

5. Boor P., Ansari G. A high performance liquid chromatographic method for quantitation of acrolein in biological samples // J Chromatogr. – 375. – 1986. – Р. 159–164.

6. Gugliucci A., Tsuji M., Kinugasa E., Ogata H., Ikeda H., Shikama Y., Kimura S. de Gruyter. Reference Global High free serum acrolein levels in bacterial infection and other disease states associated with oxidative stress: a potential biomarker? // J. Clinical Chemistry and Laboratory Medicine. – 2007. – Vol. 45. – № 11. – P. 1559–1560.

7. Kaori Sakata, Keiko Kashiwagi, Shahara Sharmin et all. Increase in putrerscine, amine oxidase, and acrolein in plasma of renal failure patients // Biocem. And Biophysical Research Communications. – 2003. – 305. – Р. 143–149.

8. Sameer Al-Rawithi, Adnan El-Yazigi, and Paul J. Nicholls. Determination of Acrolein in Urine by Liquid Chromatography and Fluorescence Detection of Its Quinoline Derivative // J. Pharmaceutical Research. – Vol. 10. – № 11. – 1993. – Р. 1587–1591.

9. Schulte-Ladbeck R., Lindahl R., Levin J. O., Karst U. J.// Environ. Monit. 2001, 3, 306-310.

10. Toxicological Profile for Acrolein. Toxic Substances Portal – Acrolein. – August 2007. – Интернет-источник http://www.atsdr.cdc.gov/ substances/ toxsubstance.asp? toxid = 102.

Угроза здоровью человека и его благосостоянию, связанная с загрязнением окружающей среды, является в настоящее время одной из самых актуальных проблем. По данным ВОЗ, загрязнение окружающей среды обуславливает во всем мире примерно 25 % всех заболеваний, при этом на долю детей приходится более 60 %, вызванных этой причиной. В докладах экспертов Всемирной организации здравоохранения по критериям качества окружающей среды в связи с воздействием на организм человека наиболее токсичных соединений рекомендуется проводить биомониторинг с определением их содержания в биосредах [2]. Исследование биосред человека на содержание компонентов антропогенной нагрузки в большей степени определяется точностью и чувствительностью существующих аналитических методов определения.

К числу приоритетных загрязнителей окружающей среды относится акролеин (класс опасности 2) – простейший ненасыщенный альдегид, который поступает в окружающую среду с выбросами автотранспорта, предприятий органичес­кого синтеза, химического, нефтехимического, электротехнического, литейного и ряда других производств [1, 3]. Немаловажное значение имеет загрязнение акролеином воздуха жилых и служебных помещений, связанное с выделением этого соединения из высокотемпературных полимерных материалов, бумаги и текстильных изделий, табачного дыма, при приготовлении пищи (жарка, копчение) [1, 3]. В условиях хронической экспозиции акролеин оказывает общераздражающее, аллергенное, мутагенное, эмбриотоксическое действие, [3].

Следует отметить, что акролеин является естественным метаболитом организма человека, он образуется эндогенно в процессе окисления биогенных полиаминов. Другой источник образования – биотрансформации лекарственных препаратов [9].

Для оценки риска воздействия акролеина на здоровье человека в условиях хронической экспозиции актуальным является определение содержания акролеина в биологических средах населения, проживающих на территориях с различным уровнем воздействия. Решение этой задачи связано с разработкой и совершенствованием химико-аналитических методов, обеспечивающих высокую чувствительность, селективность и надежность определения.

Цель исследования – провести аналитический обзор физико-химических методов определения акролеина в биологических средах, представленных в отечественной и зарубежной литературе.

Обзор аналитических методов. Для определения акролеина в биологических средах в настоящее время используют в основном методы высокоэффективной жидкостной и газовой хроматографии. В зависимости от способа пробоподготовки матрицы анализируют непосредственно акролеин или его производное. Обобщенные сведения хроматографических методов определения акролеина приведены в таблице.

Хроматографические методы определения акролеина в биологических средах

Примечания: а – газовая хроматография с масс-спектрометрическим детектированием, б – высокоэффективная жидкостная хроматография с флуориметрическим детектированием, в – высокоэффективная жидкостная хроматография с ультрафиолетовым детектированием, г – 2,4-динитрофенилгидразин.

Метод прямого обнаружения акролеина в моче разработан Sakura и др. [10]. В процессе анализа образец мочи объемом 0,5 см3 нагревают до 80 °C, переводят акролеин в паровоздушную среду над жидкостью. Пары анализируются с использованием метода ГХ/МС, который обеспечивает чувствительность обнаружения от 1 до 5 нм (0,056–0,28 мкг/дм3) акролеина в моче. Процент открываемости составляет 7–87,9 %. Авторами была отмечена невоспроизводимость результатов из-за различной способности акролеина переходить в паровую фазу из различных образцов мочи во время нагревания.

Авторы Boor P. и Ansari G. [5] разработали метод обнаружения нанограммовых количеств акролеина в биологических образцах. Реагент для дериватизации 2,4-динитрофенилгидразин инкубируют с гомогенатом печени или почек в течение короткого периода времени. Производное акролеина с ДНФГ затем экстрагируют из образцов хлороформом. Анализ акролеина осуществляют путем элюирования на обращенно-фазной колонке с использованием высокоэффективной жидкостной хроматографии (ВЭЖХ) и обнаружению аддукта по ультрафиолетовому поглощению. Предел обнаружения < 0,2 нг в 0,5 см3 метанола. Мешающее влияние могут оказывать другие альдегиды и кетоны.

Известен способ определения акролеина при взаимодействии его с реагентом ламинарином в 0,1 М растворе серной кислоты, экстракции деривата метиленхлоридом, высушивании и растворении в ацетонитриле. Анализ проводится методом ВЭЖХ/ФЛД. Предел обнаружения 5,6 мкг/дм3, процент открываемости 78–82 % [1].

Авторы Blair E. Miller и Neil D. Danielson [4] предлагают предколоночную ВЭЖХ дериватизацию виниловых альдегидов (акролеина, кротонового альдегида и метакролеина), присутствующих в спиртовых напитках, с использованием реагента антрона. Преимущество данного реагента – в его селективности по отношению к непредельным альдегидам, т.к. реакция дериватизации идет по двойной связи. Проведенные авторами исследования показали, что для полной реакции дериватизации с антроном достаточно 10 мин при комнатной температуре. Разделение образующихся при этом флуоресцирующих производных бензантрона достигнуто на колонке с обращенной фазой С18. Предел обнаружения альдегидов при флуориметрическом детектировании достигает 0,005 ррm.

Большое количество методов анализа свободного акролеина основано на его взаимодействии с 3-аминофенолом в кислой среде и анализе производного акролеина – 7-гидроксихинолина. Методы отличаются высокой чувствительностью и селективностью [7, 8, 6].

Sameer Al-Rawithi с соавторами [8] предлагают определение акролеина в моче в виде производного, образующегося при взаимодействии с 3-аминофенолом в присутствии гидроксиламина и сульфата железа при нагревании до 100 °C в течение 15 минут. Анализ акролеина в виде флуоресцирующего производного проводят методом ВЭЖХ/ФЛД. В качестве подвижной фазы используют смесь 0,05 М раствора 2-х основного фосфата аммония (рН = 2,5), ацетонитрила и метанола в соотношении 90:6:2 (об. %). Выход регистрируют флуориметрически при длине волны возбуждения и излучения 360 и 495 нм соответственно. Авторы метода исследовали условия проведения реакции дериватизации и предложили оптимальный вариант для максимального образования производного в моче. Диапазон измеряемых концентраций 1–20 мкг/см3. Процент открываемости 99–104,1 %.

Kaori Sakata, Keiko Kashiwagi, Shahara Sharmin и др. [7] исследовали содержание пуртесцина, его метаболита акролеина и аминооксидазы в плазме крови пациентов с почечной недостаточностью. В процессе пробоподготовки плазму крови тщательно очищают от эритроцитов: кровь, содержащую 1 мг/мл динатриевой соли этилендиаминтетрауксусной кислоты, центрифугируют со скоростью 1500 об/мин 30 минут при температуре 4 °С. Определение свободного акролеина проводят в виде его производного, для чего реакционную смесь (0,2 мл), содержащую 0,1 мл плазмы, 23 мМ 3-аминофенола, 43 мМ гидроксиламина гидрохлорида и 1,5 N хлористоводородную кислоту, кипятят 10 мин. Измерение образующегося производного акролеина – 7-гидроксихинолина проводят методом ВЭЖХ, отбирая для анализа 0,08 см3 супернатанта после центрифугирования реакционной смеси. Анализируют обработанную пробу на жидкостном хроматографе с флуориметрическим детектором при длине волны возбуждения 358 нм и длине волны эмиссии 510 нм.

В работе Gugliucci A. и соавторов [6] описывается методика флуориметрического определения акролеина в плазме и сыворотке крови. К отобранной крови добавляют цитрат натрия (5 ммоль/л) или динатриевую соль этилендиаминтетрауксусной кислоты (5 ммоль/л) в качестве антикоагулянта. Кровь центрифугируют при 1600 g, при температуре 4 °С в течение 7 минут, и разделенную сыворотку или плазму немедленно анализируют, или подвергают замораживанию до –80 °С до проведения анализа. Далее акролеин подвергается реакции с 3-аминофенолом в кислотной среде. К 250 мм3 сыворотки добавляют 70 мм3 8М НСl и 70 мм3 3-аминофенол-гидроксиламина, центрифугируют при 10000 g, выдерживают в течение 30 минут при 4 °С, далее 30 минут при 37 °С. Анализ проводят при длине волны возбуждения 350 нм и эмиссии 505 нм. Калибровочный график на акролеин выполняют в этих же условиях. Анализ проводят на спектрофлуориметре SPECTRAmax Gemini XPS с программным обеспечением SOFTmax PRO (Molecular Devices, Sunnyvale, CA, USA).

Стоит отметить, что в организме человека акролеин может находиться не только в свободном, но и в связанном виде. Анализ акролеина в связанном виде основан на его определении в виде метаболитов, например, S-(3-гидроксипропил)-L-цистеина.

Alarcon (1976) [10] разработал метод определения метаболита акролеина в моче – 3-гидроксипропилмеркаптуровой кислоты. Метод заключается в подкислении мочи для преобразования метаболита в S-(3-гидроксипропил)-L-цистеин, количество которого можно определить с помощью аминокислотного анализатора.

Sanduja и др. (1989) [10] определял метаболит акролеина S-(3-гидроксипропил)-L-цистеин непосредственно в моче методом ВЭЖХ с УФ-детектором при длине волны 210 нм. Мочу центрифугируют, высушивают и перерастворяют в воде. Чувствительность определения составляет 1,25 мкг/см3.

Заключение

В ходе проведенного анализа существующих на сегодняшний день методов определения акролеина в биологических средах можно сделать следующие выводы:

– при осуществлении биомониторинговых исследований проводится анализ свободного или связанного акролеина в моче, цельной крови, плазме и сыворотке;

– высокая реакционная способность свободного акролеина определяет специфику подготовки проб с проведением реакции дериватизации и анализ в виде стабильного соединения;

– селективность анализа акролеина в биологических средах обеспечивается методами газовой и жидкостной хроматографии;

– высокая чувствительность определения обеспечивается флуориметрическим детектированием за счет способности производных акролеина к флуоресценции;

– предпочтение в анализе акролеина отдается методам высокоэффективной жидкостной хроматографии с флуориметрическим или ультрафиолетовым детектором в сочетании с реакцией дериватизации.

Дегтев М.И., д.х.н., профессор, заведующий кафедрой аналитической химии Пермского государственного национального исследовательского университета, г. Пермь;

Онорин С.А., д.х.н., профессор кафедры химии и биотехнологии Пермского государственного технического университета, г. Пермь.

Работа поступила в редакцию 26.03.2014.

Библиографическая ссылка