Техника хирургического лечения катаракты постоянно совершенствуется, однако до настоящего времени она не лишена ряда послеоперационных осложнений, которые сопровождаются повторным, значительным снижением зрения (вторичная катаракта, кистозная дистрофия сетчатки и др.). Вторичная катаракта является наиболее частым послеоперационным осложнением и развивается даже после успешно выполненной операции. Частота ее возникновения колеблется от 3 до 87 %, поэтому, если подходы к профилактике и лечению этой патологии не улучшатся, то она станет второй по значимости причиной слепоты в мире после возрастной катаракты [2, 7].
Важно отметить, что причина вторичной катаракты хирургически неустранима, так как сложившийся возрастной нейродистрофический процесс (возрастная катаракта) [5, 8, 10] побуждает клетки хрусталика к патологической регенерации, одним из проявлений которой является изменение фенотипа этих клеток.
В настоящее время доказано, что фенотип клеток хрусталика при различных видах катаракты подвержен значительным изменениям. Выявлено, что при возрастной корковой и вторичной катаракте эпителий и волокна коркового отдела вещества хрусталика накапливают иммунореактивную метку к нейронспецифической энолазе, белку S-100 и виментину, но не проявляют иммунопозитивности к α-гладкомышечному актину и панцитокератину. Полученные данные свидетельствуют об общности патогенетических механизмов возрастной корковой и вторичной катаракты пролиферативного вида [4, 6, 10].
Также установлено, что важнейшим фактором изменения тканевой дифференцировки живых организмов является влияние трофической нервной системы. Установлено, что формирование пролиферативного вида вторичной катаракты происходит на фоне преобладающих симпатических эффектов вегетативной нервной системы пациента; фиброзный вид вторичной катаракты формируется в условиях преобладающих парасимпатических влияний. Выявленная закономерность позволяет рассматривать вторичную катаракту в качестве локального проявления возрастного нейродистрофического процесса, что служит очередным доказательством важности трофической роли нервной системы в фундаментальном процессе поддержания стабильности тканевой дифференцировки и тканевого метаболизма [1, 5, 8].
Полноценность регенерации хрусталика у различных видов животных сильно варьируется – от восстановления небольших дефектов до полного восстановления утраченного хрусталика. У человека регенерации полноценного хрусталика не происходит, примером этому служит вторичная катаракта. Выделяют следующие виды вторичной катаракты:
1 – фиброз задней капсулы хрусталика (вторичная катаракта фиброзного вида);
2 – вторичная катаракта пролиферативного вида с образованием клеток-шаров Адамюка-Эльшнига (син. Жемчужины Эльшнига – это шарообразные клеточные конгломераты на внутренней поверхности капсулы хрусталика, возникающие вследствие избыточной регенерации клеток эпителия хрусталика, оставшихся после хирургического лечения катаракты, которые приобретают вытянутую, отростчатую или шаровидную форму, а также способность к пролиферации и миграции);
3 – утолщение капсулы хрусталика [2, 6, 11].
Важно, что в послеоперационном периоде у пациента с возрастной корковой катарактой достоверно чаще формируется вторичная катаракта пролиферативного вида, при этом у пациента с возрастной ядерной катарактой – фиброзного вида (фиброз задней капсулы хрусталика) [2, 6].
Очевидно, что решение проблемы первичного возрастного и вторичного послеоперационного катарактогенеза связано с необходимостью расширения современных представлений о регенерации хрусталика в возрастном аспекте.
Таким образом, поиск новых эффективных патогенетически обоснованных способов профилактики и лечения вторичной катаракты с учетом важной роли медиаторов в нейрогуморальной регуляции функционирования клеток эпителия хрусталика следует рассматривать как важную актуальную задачу для экспериментальной биологии и медицины.
Цель исследования – создание новой эффективной патогенетически обоснованной модели способа консервативного лечения и профилактики пролиферативного вида вторичной катаракты in vitro.
Материал и методы исследования
Исследованы капсула и вещество 60 хрусталиков, извлеченных интракапсулярно при энуклеации глазного яблока под глубоким внутрибрюшинным наркозом у 30 лабораторных белых крыс массой 120–160 г. Для внутрибрюшинного введения использована смесь: Rompum 2 %: 235 µl, Ketamin 50 mg/ml: 2656 µl, NaCl 0,9 %: 22109 µl; на крысу весом 100 г вводится 500 µl данного раствора. Помутнение коры хрусталиков крыс in vitro вызвано путем добавления к среде культивирования катарактогенного агента – кальция хлорид в конечной концентрации 0,18 мМ [9].
Влияние на прозрачность хрусталиков антикатарактальных глазных капель и веществ с предполагаемым антикатарактальным эффектом изучено следующими методами: метод биомикроскопии интракапсулярно извлеченных хрусталиков с целью идентификации вида экспериментальной катаракты; фотометрия с помощь прибора КФК-3 для количественного измерения оптической плотности хрусталика; статистическая достоверность результатов определена критерием Вилкоксона‒Манна‒Уитни [3].
Хрусталики, удаленные интракапсулярно, культивированы в течение 8 суток in vitro в питательной среде № 199 с добавлением катарактогенного агента и изучаемых антикатарактальных веществ: глазные капли «Офтан-Катахром», в состав которых входят цитохром С, аденозин, никотинамид в конечных концентрациях 0,135, 0,4 и 4 мг/мл соответственно; глазные капли «Квинакс», содержащие натрия азапентацен полисульфонат в конечной концентрации 0,03 мг/мл; ондансетрона гидрохлорида дигидрат в конечной концентрации 0,2 мг/мл (антагонист серотониновых рецепторов) и β-диметил-аминоэтилового эфира бензгидрола гидрохлорид или димедрол в конечной концентрации 10 мг/мл (блокатор Н1-гистаминорецепторов).
Проведены следующие серии опытов: серия № 1 – питательная среда № 199 (10 хрусталиков); серия № 2 – питательная среда № 199 + кальция хлорид (10 хрусталиков); серия № 3 – питательная среда № 199 + кальция хлорид + одно из изучаемых антикатарактальных веществ (40 хрусталиков).
Все действия, предусматривавшие контакт с лабораторными животными, осуществлены с учетом требований «Правил проведения работ с использованием экспериментальных животных» согласно Приказу МЗ СССР № 755 от 12.08.1977 г. [3] и в соответствии с «Европейской конвенцией о защите позвоночных животных, используемых для экспериментов или в научных целях» от 18.12.1986 г.
Результаты исследования и их обсуждение
За указанный период времени во всех хрусталиках серии № 1, культивируемых в питательной среде без добавления катарактогенного агента, полностью сохранены их прозрачность и морфология. По данным фотометрии оптическая плотность хрусталиков данной серии в среднем равна 0,082 ± 0,006 А.
В серии № 2 на 3–4 сутки культивирования формируется выраженное помутнение коры хрусталиков (клиновидные помутнения серовато-белого цвета, обращенные основанием к экватору хрусталика, а вершиной к его ядру). Установлено, что оптическая плотность хрусталиков с экспериментальной корковой катарактой в среднем равна 0,68 ± 0,02 А (P < 0,04).
В серии № 3 установлено, что степень выраженности помутнения коры хрусталика и улучшение его оптических свойств различно в условиях добавления разных антикатарактальных веществ.
Добавление в питательную среду в качестве антикатарактального агента глазных капель «Офтан-Катахром» способствует уменьшению оптической плотности помутневших хрусталиков в 2,1 раза, которая в среднем равна 0,321 ± 0,005 А (P < 0,1).
При добавлении глазных капель «Квинакс» оптическая плотность хрусталиков в среднем составляет 0,308 ± 0,004 А (P < 0,1), что в 2,2 раза меньше, чем в серии № 2.
Антагонист серотониновых рецепторов способствует поддержанию прозрачности хрусталиков практически на уровне интактных и улучшает оптические свойства помутневших хрусталиков, удерживая их оптическую плотность на 0,202 ± 0,01 А (P < 0,02), что в 3,4 раза меньше, чем в серии № 2.
Добавление блокатора Н1-гистаминорецепторов уменьшает оптическую плотность хрусталиков до 0,265 ± 0,01 А (P < 0,1), что в 2,6 раза меньше, чем в серии № 2.
Результаты оценки степени помутнения вещества и капсулы хрусталиков в различных сериях эксперимента, полученные с помощью визуального наблюдения при биомикроскопии, полностью совпадают с результатами фотометрического исследования хрусталиков после их культивирования in vitro.
Установлено, что ондансетрона гидрохлорида дигидрат и β-диметиламиноэтилового эфира бензгидрола гидрохлорид обладают в сравнении с широко известными антикатарактальными глазными каплями («OFTAN-Catachrom», «Quinax») превосходящей по эффективности способностью улучшать оптические свойства вещества и капсулы помутневшего хрусталика. С учетом выявленной ранее общности этиопатогенетических механизмов возрастной корковой и вторичной пролиферативной катаракты [6, 9, 10] полученные результаты позволили разработать новый способ моделирования консервативного лечения и профилактики пролиферативного вида вторичной катаракты (заявка на изобретение Российской Федерации № 2012155416 от 19.12.2012 г.).
Важно отметить, что патогенетически обоснованная необходимость дифференцированного подхода к лечению разных видов вторичной катаракты способна значительно повысить качество, эффективность и снизить затраты государственного финансирования на лечебно-профилактические мероприятия вторичной катаракты, в том числе за счет снижения числа нуждающихся в хирургическом и лазерном лечении.
Приведенные в настоящей работе сведения послужили основанием для предложения «Способа экспериментального моделирования коркового вида катаракты in vivo» (заявка на изобретение РФ № 2012155291 от 19.12.2012 г.).
Заключение
Таким образом, предложенный способ моделирования in vitro консервативного лечения и профилактики вторичной катаракты пролиферативного вида позволяет приступить к проведению доклинических испытаний новых патогенетически обоснованных глазных капель, обладающих выраженным антикатарактальным эффектом.
Работа выполнена при финансовой поддержке гранта Федеральной целевой программы «Научные и научно-педагогические кадры инновационной России» Министерства образования и науки Российской Федерации (номер соглашения 14.В37.21.0221).
Рецензенты:
Сергеева В.Е., д.б.н., профессор кафедры медицинской биологии с курсом вирусологии, ФГБОУ ВПО «Чувашский государственный университет имени И.Н. Ульянова», г. Чебоксары;
Паштаев Н.П., д.м.н., заведующий кафедрой офтальмологии и отоларингологии, ФГБОУ ВПО «Чувашский государственный университет имени И.Н. Ульянова», директор Чебоксарского филиала МНТК «Микрохирургия глаза» имени академика С.Н. Федорова», г. Чебоксары.
Работа поступила в редакцию 22.08.2013.
Библиографическая ссылка
Корсакова Н.В. МОДЕЛИРОВАНИЕ IN VITRO НОВОГО СПОСОБА КОНСЕРВАТИВНОГО ЛЕЧЕНИЯ И ПРОФИЛАКТИКИ ВТОРИЧНОЙ КАТАРАКТЫ ПРОЛИФЕРАТИВНОГО ВИДА // Фундаментальные исследования. – 2013. – № 9-4. – С. 665-668;URL: https://fundamental-research.ru/ru/article/view?id=32491 (дата обращения: 17.08.2024).