Научный журнал

Фундаментальные исследования

ISSN 1812-7339

"Перечень" ВАК

ИФ РИНЦ = 1,674

• Авторы
• Резюме
• Файлы
• Ключевые слова
• Литература

Иванов В.В. 1 Денисенко О.Н. 1

---

1 Пятигорский медико-фармацевтический институт

Впервые был определен качественный состав и количественное содержание полифенольных соединений горца (рейноутрии) сахалинского, инродуцированного в условиях Кавказских Минеральных Вод с помощью химических и инструментальных методов. Горец (рейноутрия) сахалинский содержит значимое количество полифенольных соединений, которые могут определять антиоксидантную активность данного растения. Установлены наиболее информативные и технологичные методы определения полифенольных соединений в траве горца (рейноутрии) сахалинского. Идентифицированы такие полифенольные соединения, как рутин, дигидрокверцетин, цикориевая кислота, феруловая кислота, кофейная кислота, неохлорогеновая кислота, наличие которых в исследуемом растении позволяет предполагать возможность использование его после соответствующих фармакологических и клинических исследований для профилактики и лечения таких заболеваний, как атеросклероз, болезнь Альцгеймера, сахарный диабет 2 типа и другие.

Статья в формате PDF

283 KB

горец (рейноутрия) сахалинский

полифенольные соединения

1. Иванов В.В. Предварительное фитохимическое исследование травы рейноутрии сахалинской (Reynoutria sachalinense // Разработка, исследование и маркетинг новой фармацевтической продукции: сб. науч. тр. – Пятигорск, 2009. – Вып. 64. – С. 54–55.

2. Ищенко З.В. Флавоноидный состав надземной части морозника абхазского (Helleborus abchazicus) и морозника кавказского (Helleborus caucasicus A.Br.) / З.В. Ищенко, М.И. Кодониди, О.Н. Денисенко / Разработка, исследование и маркетинг новой фармацевтической продукции: сб. науч. тр. – Пятигорск, 2011. – Вып. 66. – С. 103–104.

3. Система антиоксидантной защиты организма и старение / А.А. Подколзин, А.Г. Мегреладзе, В.И. Донцов, С.Д. Арутюнов, О.М. Мрикаева, Е.А. Жукова // Профилактика старения. – 2000. – № 3. – Библ. 164 назв.

4. Свищенко Е.П., Коваленко В.Н. Гипертоническая болезнь. Вторичные гипертензии. – Киев, 2002. – 204 с.

5. Топчий И.И., Горбач Т.В., Бондарь Т.Н. Взаимосвязь изменений антиоксидантной системы и метаболизма оксида азота у больных хронической болезнью почек с артериальной гипертензией // Серце і судини. – № 1. – С. 89–94.

6. Химический анализ лекарственных растений: учеб. пособие для фарм. вузов / под ред. Н.И. Гринкевич, Л.Н. Сафронович – М.: Высш. шк., 1983. – 176 с.

7. Чернова Е.В. Фенольные соединения энотеры двулетней / Е.В. Чернова, С.Г. Юнусова, О.Н. Денисенко // Разработка, исследование и маркетинг новой фармацевтической продукции: сб. науч. тр. – Пятигорск, 2009. – Вып. 64. – С. 122–123.

8. Kaneto H., Katakami N., Matsuhisa M., Matsuoka T.A. (2010) // Role of reactive oxygen species in the progression of type 2 diabetes and atherosclerosis: Mediators Inflamm. – 2010.

В настоящее время сформированы представления о том, что нарушение баланса прооксидантных и антиоксидантных факторов, приводит к повышенной продукции свободных радикалов и развитию оксидантного стресса, а также являются универсальным молекулярным механизмом развития различных заболеваний сердечно-сосудистой, нервной, эндокринной и иммунной систем [4, 5, 8]. Оксидантный стресс является одной из причин самых распространенных заболеваний, таких как атеросклероз, гипертоническая болезнь, болезнь Альцгеймера, сахарный диабет 2 типа, болезнь Паркинсона, а также быстрого старения организма. Однако он же является и защитным механизмом, с помощью которого иммунная система борется с различными патогенами. Это является тонкой гранью между полезным свойством оксидативного стресса и его пагубным воздействием на организм [3]. Антиоксидантная система состоит из внутренних антиоксидантов и получаемых извне. Основными внутренними антиоксидантами являются ферменты: супероксиддисмутаза, каталаза и пероксидаза (глутатионпероксидаза). Но этого часто оказывается недостаточно для полноценной защиты организма от действия свободных радикалов, поэтому по сей день продолжается поиск источников биологически активных веществ, обладающих антиоксидантными свойствами. Одним из предпочтительных источников поиска таких БАВ являются растительные объекты. Фенольные соединения, содержащиеся во многих растениях, обладают сильными антиоксидантными свойствами. Одним из перспективных растительных объектов, содержащих полифенольные соединения является горец (рейноутрия) сахалинский.

Горец (рейноутрия) сахалинский (Polygonum sachalinense – Reynoutria sachalinensis (F.Schmidt) Nakai) многолетнее травянистое растение, достигающее высоты 3 м. Подземные органы представлены ползучим корневищем с тонкими шнуровидными придаточными корнями, от которого отходят многочисленные прямые, полые, прочные стебли, зеленого или бурого цвета. Листья яйцевидно-сердцевидные, широкоовальные или овально-продолговатые, на коротких черешках, длиной до 20 см. Цветки мелкие, многочисленные, беловато-кремовые, собранные в короткие пазушные метельчатые соцветия. Околоцветник воронковидный, при плодах сильно разрастающийся и скрывающий плод. Плод – трёхгранный темно-бурый блестящий орешек. Цветет этот вид в июле-сентябре [1].

Материалы и методы исследования

Качественное и количественное определение полифенольных соединений проводили методами бумажной хроматографии, тонкослойной хроматографии, спектрофотометрии и ВЭЖХ.

Наличие флавоноидных соединений определяли в этилацетатных фракциях и водных извлечениях из исследуемых объектов с помощью качественных реакций [6]: одной из общепринятых методик определения флавоноидов является цианидиновая проба, основанная на восстановлении флавоноидов в кислой среде с образованием окрашенных продуктов. Реакция заключается в следующем: к 2 мл извлечения добавляли 5–7 капель концентрированной хлористо-водородной кислоты и 10–15 мг металлического цинка, нагревали на водяной бане в течение 2–3 мин до появления розовой окраски. Цианидиновая реакция по Брианту позволяет определить агликоновую или гликозидную природу исследуемого вещества. К окрашенному продуктy цианидиновой реакции добавляли 1/3 часть бутанола по объему, разбавляли водой и встряхивали. При этом по окраске гликозиды обнаруживались в воде, а агликоны – в слое органического растворителя.

Следующим этапом работы было определение полифенольных соединений в этилацетатной фракции водно-спиртового экстракта из смеси листьев и цветков методом тонкослойной хроматографии (ТСХ) на пластинках «Sorbfil», «Silufol». Наилучшее разделение полифенольных соединений наблюдалось в системах «хлороформ – спирт метиловый (8:2), хлороформ – спирт этиловый (9:1), этилацетат – кислота уксусная – вода (5:1:1)» Детектирование зон флавоноидов проводили как по собственной флюоресценции веществ в УФ-свете, так и с помощью проявителей: 5 % спиртовый раствор алюминия хлорида и в парах аммиака [2, 7]. Результаты представлены в табл. 1, 2.

Таблица 1

Фенольные соединения горца (рейноутрии) сахалинского, определенные методом бумажной хроматографии, в различных системах растворителей

Таблица 2

Фенольные соединения горца (рейноутрии) сахалинского, определенные методом ТСХ, в различных системах растворителей

Анализ с помощь ВЭЖХ для определения качественного и количественного состава полифенольных соединений проводили на высокоэффективном жидкостном хроматографе фирмы «GILSTON», модель 305 (ФРАНЦИЯ); инжектор ручной, модель RHEODYNE 7125 (USA), с последующей компьютерной обработкой результатов исследования с помощью программы «Мультихром» для Windows.

В качестве неподвижной фазы была использована металлическая колонка размером 4,6×250 мм KROMASIL C18, размер частиц 5 микрон. В качестве подвижной фазы использовали: метанол-вода-кислота фосфорная концентрированная-тетрагидрофуран, в соотношении 370:570:5:60. Анализ проводили при комнатной температуре. Скорость подачи элюента 0,8 мл\мин. Продолжительность анализа 60 мин.

Для исследования сырьё измельчали до размера частиц, проходящих сквозь сито с диаметром отверстий 2 мм по (ГОСТ 214-83). Около 10.0 г (точная навеска) лекарственного сырья помещали в колбу вместимостью 250 мл, прибавляли по 70 мл спирта этилового 70 %, присоединяли к обратному холодильнику и нагревали на кипящей водяной бане в течение 1 часа с момента закипания спиртоводной смеси в колбе. После охлаждения смесь фильтровали через бумажный фильтр в мерную колбу объёмом 100 мл и доводили спиртом этиловым 70 % до метки (раствор А). 7 мл раствора А помещали в мерную колбу вместимостью 25 мл и доводили тем же растворителем до метки, затем перемешивали (исследуемый раствор). Параллельно готовили серию 0,05 % растворов сравнения в 70 % спирте этиловом референтных веществ: рутина, кверцетина, лютеолина, лютеолин-7-гликозида, кемпферола, кумарина, гиперозида, геспередина , апигенина, галловой кислоты, кофейной кислоты, хлорогеновой кислоты, неохлорогеновой кислоты, коричной кислоты, цикориевой кислоты, феруловой кислоты, танина, эпикатехина, катехина, нарингенина, дикумарина, дигидрокверцетина. По 20 мкл исследуемых растворов и растворов референтных веществ вводили в хроматограф и хроматографировали в вышеприведенных условиях. Результаты представлены в табл. 3.

Таблица 3

Полифенольные соединения горца (рейноутрии) сахалинского, обнаруженные методом ВЭЖХ

Результаты исследований и их обсуждение

Таким образом, с помощью БХ и ТСХ были идентифицированы: рутин, кофейная кислота, феруловая кислота и неохлорогеновая кислота.

Методом внутренней нормализации определили среди идентифицированных веществ превалирующие: галловая кислота (8,39 %), дигидрокверцетин (7,29 %), катехин (3,48 %), кофейная (1,15 %) и цикориевая (1,8 %) кислоты.

Анализ результатов изучения качественного состава полифенольных соединений свидетельствует о том, что наиболее информативным и технологичным методом для определения этого класса природных соединений рейноутрии сахалинской является метод высокоэффективной жидкостной хроматографии.

Заключение

Таким образом, горец (рейноутрия) сахалинский накапливает в себе ценные биологически активные вещества фенольной природы в значимых количествах, что позволяет рекомендовать этот вид для дальнейших исследований с целью внедрения в медицинскую и фармацевтическую практику.

Рецензенты:

Андреева И.Н., д.фарм.н., профессор кафедры УЭФ последипломного образования, Пятигорский медико-фармацевтический институт, филиал ГБОУ ВПО «Волгоградский государственный медицинский университет» МЗ РФ, г. Пятигорск;

Кодониди И.П., д.фарм.н., старший преподаватель кафедры органической химии, Пятигорский медико-фармацевтический институт, филиал ГБОУ ВПО «Волгоградский государственный медицинский университет» МЗ РФ, г. Ессентуки.

Работа поступила в редакцию 07.08.2013.

Библиографическая ссылка