Научный журнал

Фундаментальные исследования

ISSN 1812-7339

"Перечень" ВАК

ИФ РИНЦ = 1,674

• Авторы
• Резюме
• Файлы
• Ключевые слова
• Литература

Глущенко Е.С. 1 Белогубов П.В. 1 Антонова А.В. 1 Семенова М.А. 1 Живодерников И.В. 1 Свеколкин В.П. 1 Викторов Д.А. 1 Мастиленко А.В. 1 Столбовская О.В. 1 Саенко Ю.В. 1

---

1 ФГБОУ ВПО «Ульяновский государственный университет»

Механизмы радиационно-индуцированной клеточной смерти раковых клеток опосредуются изменением экспрессии большого числа генов и являются скоординированным клеточным ответом, ключевую роль в котором играет белок р53. Для изучения роли гена ТР53 в ответе раковых клеток на радиационное воздействие выполнен транскриптомный анализ дифференциально-экспрессирующихся генов в раковой клеточной линии HCT116 с нормальным и мутантным геном ТР53. В ходе эксперимента раковые клетки подвергались радиационному облучению в дозе 4 Гр. Для анализа профилей экспрессии генов использовали гибридизационные ДНК-чипы высокой плотности. В результате кластерного анализа выявлено 3 группы генов с дифференциальной экспрессией. Анализ белковых взаимодействий кластеризованных генов продемонстрировал, что после радиационного облучения экспрессия связанных генов GREB1, CENPT и SREBF1 индуцируется в клетках линии НСТ-116р53+/+ и подавляется в клетках линии НСТ-116р53-/-. Экспрессия гена ZFAND5 может быть связана с устойчивостью клеток к радиационно-индуцированному апоптозу.

Статья в формате PDF

472 KB

ген ТР53

экспрессия генов

транскриптом

рак

радиационное излучение

кластерный анализ

анализ белковых взаимодействий

1. Coller H.A. Expression analysis with oligonucleotide microarrays reveals that MYC regulates genes involved in growth, cell cycle, signaling, and adhesion / H.A. Coller, C. Grandori, P. Tamayo, T. Colbert, E.S. Lander, R.N. Eisenman, T.R. Golub // Proc. Natl. Acad. Sci. U S A. – 2000. – Vol. 97, № 7. – P. 3260–3265.

2. Enns L. Low-Dose Radiation Hypersensitivity Is Associated With p53-Dependent Apoptosis / L. Enns, K.T Bogen, J. Wizniak, A.D. Murtha, M. Weinfeld // Mol. Cancer Res. – 2004. – Vol. 2. – Р. 557–566.

3. Ghandhi S. Time-series clustering of gene expression in irradiated and bystander fibroblasts: an application of FBPA clustering / S. Ghandhi, A. Sinha, M Markatou, S. Amundson // BMC Genomics. – 2011. – Vol 12. – № 1. – Р. 2.

4. He G. The Protein Zfand5 Binds and Stabilizes mRNAs with AU-rich Elements in Their 3’-Untranslated Regions / G. He, D. Sun, Z. Ou, A. Ding // Journal of Biological Chemistry. – 2012. – Vol. 287. – № 3. – P. 24967–24977.

5. Junttila M.R. Selective activation of p53-mediated tumour suppression in high-grade tumours / M.R. Junttila, A.N. Karnezis, D. Garcia, F. Madriles, R.M. Kortlever, F. Rostker, D.M. Pham, Y. Seo, G.I Evan, C.P Martins // Nature. – 2 010. – Vol. 468. – Р. 567–71.

6. Olivier M. TP53 mutations in human cancers: origins, consequences, and clinical use / M. Olivier, M. Hollstein, P. Hainaut // Cold Spring Harb. Perspect. Biol. – 2010. – Vol. 2, № 1. – P. a001008.

7. Riley T. Transcriptional control of human p53-regulated genes / T. Riley, E. Sontag, P. Chen, A. Levine // Nat. Rev. Mol. Cell Biol. – 2008. – Vol. 9. – № 5. – P. 402–412.

8. Tu Z. Oncogenic Ras Regulates BRIP1 Expression to Induce Dissociation of BRCA1 from Chromatin, Inhibit DNA Repair, and Promote Senescence / Z. Tu, K. Aird, B.G. Bitler, J. Nicodemus, N. Beeharry, B. Xia, T. Yen, R. Zhang // Developmental cell. – 2011. – Vol. 21. – № 6. – P. 1077–1091.

9. Yang J.Y. ATM, ATR and DNA-PK: initiators of the cellular genotoxic stress responses/ J.Y. Yang, H.E. Hamrick, P.J. Duerksen-Hughes // Carcinogenesis. – 2003. – Vol. 24. – № 10. – P. 1571–1580.

Механизмы радиационно-индуцированной клеточной смерти раковых клеток опосредуются изменением экспрессии большого числа генов и являются скоординированным клеточным ответом, ключевую роль в котором играет белок р53. P53 способен вызвать апоптоз клеток в ответ на повреждение ДНК [5]. Генетический анализ опухолевых клеток человека продемонстрировал ключевую роль р53 в подавлении онкологических процессов. Больше половины опухолей человека из всего широкого спектра типов несут мутации гена TP53, который кодирует белок 53, а наследование мутантного гена ТР53 делает его носителей предрасположенными к онкологическому синдрому Ли–Фраумени [6]. Мутация гена ТР53 затрагивает целый кластер других генов, экспрессия которых зависит от белка р53. Например, запуск p53-зависимого апоптоза связан с индукцией транскрипции компонентов как внешнего, так и внутреннего механизма клеточной смерти, включая такие белки, как BAX, FAS, NOXA и PUMA [7]. Известно, что мутации гена ТР53 приводят к существенным изменениям в механизме клеточного ответа на стрессовые воздействия, в частности, на радиационно-индуцированное увеличение внутриклеточной концентрации АФК. Опухоли с мутантным геном ТР53 обладают высокой радиорезистентностью и способностью к метастазированию, что, как полагают, связано с их генетической нестабильностью [9]. Результатом мутации гена ТР53 может стать разрушение нормальных и возникновение новых сетей экспрессирующихся генов, возникновение новых белковых взаимодействий, приводящих к появлению радиорезистентности.

Использование полно-транскриптомных методов анализа позволяет выявить группы, дифферециально-экспрессирующиеся в разных клеточных линиях в ответ на одно и тоже воздействие. Транскриптомные методы анализа приобретают решающее значение в изучении ответа нормальных и раковых клеток на внешние стрессовые воздействия, в частности, радиационное облучение. Один из способов изучения транскриптома основан на технологии гибридизационных ДНК-чипов высокой плотности. Основным достоинством технологии является возможность одновременного анализа экспрессии всей совокупности экпрессирующихся генов. Это в свою очередь позволяет изучать геном как целостную систему [3].

Целью настоящей работы стал поиск кластеров дифференциально-экспрессирующихся в раковых клетках с нормальным и мутантным геном ТР53 после генов скоординированная экспрессия генов, которых повторяет динамику изменения внутриклеточной концентрации АФК после радиационного облучения в раковых клетках с мутантным и нормальным по геном TP53.

Материал и методы исследования

В экспериментах использовали клеточные линии:

1) клеточная линия рака кишечника HCT-116 p53-/- (мутантная по гену ТР53);

2) клеточная линия рака кишечника HCT-116 p53+/+ (гены ТР53 дикого типа).

Клетки культивировали при 37 °С, во влажной атмосфере, содержащей 5 % СО2. Для культивирования использовали среду RPMI-1649 или DMEM, содержащую L-глутамин, 12 % фетальной коровьей сыворотки и 50 мкг/мл гентамицина. Клетки облучали рентгеновским излучением, генерируемым терапевтическим акселератором Cliniac 600 при комнатной температуре в дозах 4 Гр одноразово. Мощность дозы составляла 0,03 Гр/с, при фокусном расстоянии 104 см. Высота водяного столба над клетками составляла 1 см. Клетки облучались в 24 луночных планшетах (объём лунки 2,5 мл).

Профили экспрессии генов изучались с использованием гибридизационных ДНК-микроматриц высокой плотности серии HGU133A (Human Genome U133A) фирмы Affymetrix (Санта-Клара, Калифорния, США) через 15 мин, 12 и 24 часа после радиационного воздействия. РНК выделялось с использованием набора RNeasy Mini (Qiagen, США). Качество выделенной РНК оценивалось по целостности 18S и 28S рибосомальной РНК с использованием с помощью электрофореза в 1 % агарозном геле. Библиотека клонированных ДНК готовилась с использованием набора GeneChip Expression 3’-Amplification One-Cycle cDNA Synthesis Kit (Affymetrix). Мечение биотином антисмысловых библиотек клонированных РНК и очистка проводилась с использованием набора GeneChip Expression 3’-Amplification Reagents for IVT Labeling (Affymetrix). Матрица окрашивалась стрептовидин-фикоэритрином и сканировалась на сканере GeneAtlas System (Affymetrix, Санта-Клара, Калифорния, США) [1]. Обработка данных полученных после сканирования ДНК-микроматриц, проводилась с использованием алгоритмов MAS5.

Статистическая обработка данных экспрессии генов выполнялась с использованием программного пакета SAM (http://stat.stanford.edu/~tibs/SAM/). Для кластерного анализа и построения дендрограмм использовали программы Cluster 3.0 и TreeView. Принадлежность генов к тому или иному механизму репарации ДНК определяли по базе данных KEGG. Сравнительный анализ существующих взаимодействий среди белков выполнялся при помощи программы STRING 9.0 (доступна по адресу: – http://string-db.org).

Результаты исследования и их обсуждение

На рис. 1 представлены данные сравнительного кластерного анализа динамики транскриптома клеточных линий НСТ-116р53+/+ (с геном ТР53 дикого типа) и НСТ-116р53-/- (с мутированным геном ТР53). Из рис. 1 можно увидеть, что существует несколько кластеров генов динамика экспрессии, которые значительно отличаются между клеточными линиями НСТ-116р53+/+и НСТ-116р53-/-. 1-й кластер представлен 1 геном – RAB2A и PHF14 (группа 1, рис. 1). 2-й кластер генами NME5, SURF2, RRP15, TSFM, RNASEH2B, COPS8, DPH5, ALMS1, FBXO11, MDM1, C5orf54, CCNE2, BRIP1, QRSL1 и ERVMER34-1 (группа 2, рис. 1). 3-я группа генов представлена SREBF1, LTBP4, ZFAND5, GREB1, CENTP и GNAT3 (группа 3, рис. 1). Гены RAB2A и PHF14 в клетках линии НСТ-116р53+/+ имеют сниженную экспрессию по сравнению с контролем на протяжении всего эксперимента (1,12 и 24 ч), тогда как в клетках линии НСТ-116р53-/- их экспрессия значительно увеличена по сравнению с контрольной группой во всех временных точках. Эти гены не связаны между собой, и их продукты не вступают во взаимодействие. Ген RAB2A кодирует белок, относящийся к семейству онкогенов RAS. Его функции заключаются в транспорте комплекса RAS из эндоплазматического ретикулума в аппарат гольджи. Ген PHF14 кодирует белок с неясными функциями. Гены 2 кластера кодируют белки, относящиеся к различным сигнальным и метаболическим путям. Но все они имеют общий профиль экспрессии. В клетках линии НСТ-116р53+/+ с нормальным геном ТР53 через 1 час после радиационного воздействия их экспрессия подавлена в сравнении с контрольной группой. В клетках с мутантным геном ТР53 (линия НСТ-116р53-/-) экспрессия этого кластера генов увеличена, т.е. находится в противофазе по отношению к экспрессии этих же генов в линии НСТ-116р53+/+. Ген BRIP1 кодирует BRCA1, взаимодействующий белок С-концевой хеликазы 1.

Рис. 1. Дендрограмма, отражающая кластеризацию генов, дифференциально экпрессирующихся в клетках линии НСТ-116р53+ (с геном ТР53 дикого типа) и НСТ-116р53- (с мутантным геном ТР53) после облучения гамма-излучением. (Примечание. Чем темнее цвет, тем выше экспрессия гена по сравнению с контрольной группой. Достоверность отличий по отношению к контрольной группе установлена на уровне р < 0,05)

Он необходим для поддержания хромосомной стабильности. Участвует в репарации двойных разрывов ДНК путем гомологичной рекомбинации в манере, которая зависит от его связи с BRCA1 [8]. Ген NME5 кодирует белок, экспрессирующийся в неметастатических клетках. Наиболее важным, с нашей точки зрения, является набор генов CCNE2, RNASEH2B, COPS8 и BRIP1. Продукты этих генов ингибируют активность белка р53. В клетках с геном ТР53 дикого типа экспрессия этих генов подавлена в течении 1 часа после радиационного воздействия. Через 12 и 24 часа после облучения их экспрессия немного увеличена или не отличается от контрольной группы (рис. 1). В клетках линии НСТ-116р53-/- экспрессия этих генов на протяжении всего эксперимента является высокой по сравнению с контрольной группой.

В состав группы генов, объединенных в 3-й кластер, входят следующие гены: CENPT, GREB, ZFAND5, LTBP4, SREBF1 и GNAT3. Ген CENPT кодирует центромерный белок и является компонентом CENPA-NAC (нуклеосом-связанного) комплекса, который играет центральную роль в сборке кинетохорных белков, участвующих в процессе мейоза и сегрегации хромосом. Ген GREB1 кодирует эстроген-зависимый регулятор роста рака груди. Он является первичной мишенью в регуляции эстрогеновых рецепторов. Обладает функциями регулятора при гормон-зависимом росте рака груди и рака простаты. Ген ZFAND5 кодирует «цинковый палец», тип домена – AN1. Он может ингибировать активацию NF-kappa-B через сверхэкспрессию генов RIPK1 и TRAF6 и экспрессию фактора некроза опухолей TNF, IL-1 и TLR4-индуцировнную активацию NF-kappa-B на доз-зависимый манер. Сверхэкспрессия ZFAND5 делает клетки чувствительными к TNF-индуцированному апоптозу. Продукт гена ZFAND5 может быть также вовлечен в регуляцию активации NF-kappa-B и апоптоза [4]. Ген LTBP4 кодирует латентный трансформирующий фактор роста бета-связывающего белка 4. Продукт этого гена может быть задействован в сборке, секреции и доставки TGFB1 в сайты связывания, в которых они хранятся и/или активируются. Продукт этого гена может играть решающую роль в контроле активности TGFB1 и может иметь структурную роль во внеклеточном матриксе. Ген SREBF1 кодирует стерол-регуляторный элемент связывания транскрипционного фактора 1. Активатор транскрипции, необходимый для гомеостаза липидов, регулирует транскрипцию гена рецептора ЛНП, а также жирных кислот и в меньшей степени пути синтеза холестерина. Ген GNAT3-гуанин-нуклеотид связывающий белок (G-protein) играет важную роль в трансдукции горького и сладкого вкуса, а также в трансдукции вкуса однозамещенного глутамата натрия и инозинмонофосфата.

Рис. 2. Карта белковых взаимодействий генов, объединённых в 3-й кластер (рис. 1). Черной окантовкой выделены белки, гены которых были отобраны в результате кластеризации. Остальные белки отображены на карте для демонстрации взаимосвязей отобранных генов

Динамика экспрессии генов этой группы отличается больше всего среди 3-х найденных кластеров. В клетках линии НСТ-116р53-/- экспрессия этих генов снижена во всех временных точках, тогда как в клетках линии НСТ-116р53+/+ она повышена по сравнению с контрольной группой.

На рис. 2 представлена карта взаимодействия продуктов генов 3 кластера. Как видно из рисунка, в клетке формируется 1 белковый ансамбль, в котором участвуют продукты 3 генов, объединённых в 3-й кластер. Это гены GREB1, CENPT и SREBF1, которые связаны с активностью белка р53. Однако, исходя из функций этих генов, нельзя выявить их роль в процессах радиорезистентности. На роль генов, участвующих в развитии радиорезистентности, больше подходит ген ZFAND5. Его сверхэкспрессия делает клетки чувствительными к TNF-индуцированному апоптозу, который опосредуется каспазой 8 и 3. В клетках линии НСТ-116р53+/+ гамма-излучение индуцирует апоптоз через внешний механизм, тогда как в клетках линии НСТ-116р53-/- гамма-излучение не индуцирует апоптоз [2]. Сделанные ранее опыты согласуются с данными экспериментов по определению экспрессии генов с использованием ДНК-микроматриц.

В заключение, можно сделать вывод, что после радиационного облучения экспрессия связанных генов GREB1, CENPT и SREBF1 индуцируется в клетках линии НСТ-116р53+/+ и подавляется в клетках линии НСТ-116р53-/-. Экспрессия гена ZFAND5 пропорциональна устойчивости клеток к радиационно-индуцированному апоптозу.

Работа выполнена при поддержке Федеральной целевой программы «Исследования и разработки по приоритетным направлениям развития научно-технологического комплекса России на 2007–2013 годы» ГК № 14.512.11.0058.

Рецензенты:

Балыкин М.В., д.б.н., профессор, заведующий кафедрой адаптивной физической культуры Института медицины, экологии и физической культуры, ФГБОУ ВПО «Ульяновский государственный университет», г. Ульяновск;

Слесарев С.М., д.б.н., доцент, заведующий кафедрой биологии и биоэкологии Института медицины, экологии и физической культуры, ФГБОУ ВПО «Ульяновский государственный университет», г. Ульяновск.

Работа поступила в редакцию 07.08.2013.

Библиографическая ссылка