Разработка в эксперименте раневых покрытий для заживления повреждений, вызванных различными механическими, термическими и другими факторами (гнойно-воспалительными, дистрофическими процессами и др.) является актуальной научно-практической задачей [6].
Использование раневых покрытий, отличающихся отсутствием токсичности, способностью к биодеградации и высокой эффективностью в лечении гнойно-воспалительных заболеваний позволяет воздействовать на метаболический дисбаланс в тканях при сохранении активности факторов регенерации.
Пристальное внимание уделяется покрытиям на основе хитозана, обладающего помимо широкого спектра биологических свойств высокой биосовместимостью и биодеградируемостью [5, 9]. Немаловажным фактором являются антибактериальные свойства данного природного полимера [3, 7].
Исследование свойств наночастиц металлов показало их ранозаживляющую активность, регенерирующие и бактерицидные свойства, что делает перспективным их использование для лечения гнойно-воспалительных осложнений в составе раневых покрытий. Биологически активные наночастицы металлов обладают пролонгированным действием из-за наличия на их поверхности защитного оксидного или гидрооксидного слоя, предотвращающего быстрое растворение металла и образование многочисленных, продолжительно действующих очагов ионов [8, 10].
Цель работы: оценка влияния комплексного препарата на основе хитозана и наночастиц металлов на репаративную регенерацию в условиях полнослойной гнойной раны, инфицированной музейным и клиническим штаммами Staphylococcus aureus.
Материалы и методы исследования
В исследование применялся комплексный препарат (заявка № 2012119622 приор. от 16.05.12 г. – положительное решение на выдачу патента 21.01.2013 г.), состоящий из нанопорошков меди и цинка, полученных с помощью плазменной технологии, основанной на испарении сырья до частиц ультрадисперсного размера в плазменном потоке с температурой 5000–60000 К, а также хитозана пищевого (качество соответствует ТУ 9289-067-00472124-03, произведенного ЗАО «БИОПРОГРЕСС», г. Москва).
Объектом исследования явились 60 белых крыс-самцов, весом 130–140 г, у которых формировали полнослойную кожную рану размером 20×20 мм в межлопаточной области. Рану инфицировали музейным штаммом № 254658 S. aureus (MRSA) NCTC 13373/ATCC 43300 и клиническим метициллинрезистентным штаммом S. aureus № 754, выделенным от больного травматолого-ортопедического профиля.
Животные были разделены на 4 группы по 15 крыс в каждой:
1 группа (сравнения) – крысы с полнослойной кожной раной, инфицированной клиническими штаммами St.aureus, рана заживала естественным путем;
2 группа (опытная) – крысы с полнослойной кожной раной, инфицированной клиническими штаммами St. aureus, получавшие лечение комплексным препаратом;
3 группа (сравнения) – крысы с раной, инфицированной музейными штаммами St.aureus, рана заживала естественным путем;
4 группа (опытная) – животные, инфицированные музейными штаммами St.aureus, получавшие лечение комплексным препаратом.
Для оценки эффективности лечения использовали экспериментальные, планиметрические, цитологические, гистологические, микробиологические, биохимические и статистический методы.
Бактериологическое исследование гнойной раны включало количественное изучение раневой микрофлоры в динамике на 1-е, 3-и, 5-е, 7-е, 14-е сутки лечения. Гистологическую оценку тканей раневой поверхности производили с использованием окрашивания препаратов альциановым синим для выявления кислых гликозаминогликанов и по Маллори трихром для выявления коллагена. Интенсивность процессов эпителизации оценивали с помощью морфометрических измерений толщины эпидермиса с использованием окуляр-микрометра. Биохимические исследования включали в себя определение показателей липопероксидации (содержание малонового диальдегида (МДА) в сыворотке крови экспериментальных животных [2] и антиоксидантной защиты (активность церулоплазмина [1, 4].
Статистическую обработку полученных данных проводили с помощью программы «Statistica 6.0», предназначенной для оценки результатов медицинских и биологических наблюдений, с вычислением средней арифметической (М), среднеквадратического отклонения (σ), средней ошибки средней арифметической (m), коэффициента достоверности (t), показателя вероятности (р).
Результаты исследования и их обсуждение
Формирование гнойного процесса обеспечивали путем внесения 1 мл суспензии S. aureus в количестве 1·109 КОЕ/мл на раневую поверхность. Через 3 суток отмечали характерные местные проявления и изменения картины периферической крови, наличие в ране монокультуры золотистого стафилококка при отсутствии другой сапрофитной флоры.
Нанесение комплексного препарата осуществляли однократно на область раны из расчета 1 г на 400 мм2 поверхности.
Во 2-й (опытной) группе уже к 3-м суткам с момента начала лечения происходило снижение обсемененности ран по сравнению с группой животных, не получавших лечения, бактериальная флора была представлена монокультурой S. aureus. Под влиянием препарата происходило более динамичное заживление экспериментальной раны, чем у животных группы сравнения. К 7-м суткам с начала лечения рана полностью очищалась от возбудителя. В то же время у крыс 1 группы (сравнения) рана оставалась инфицированной S. aureus до 21-х суток (3·103 КОЕ/г). Кроме того, у 6 животных отмечалось вторичное инфицирование – высевалась Escherichia coli в количестве 6·105 КОЕ/мл (табл. 1).
Во 4-й (опытной) группе нанесение комплексного препарата на инфицированную раневую поверхность также приводило к снижению бактериальной обсемененности, начиная с 3-х суток с начала лечения в отличие от показателей в 3-й группе сравнения. У крыс 4-й опытной группы отмечено прекращение бактериального роста также на 7-е сутки. В 3-й группе сравнения у животных, инфицированных музейным штаммом, в отличие от 1-й группы сравнения отмечено прекращение бактериального роста уже на 16-е сутки с начала наблюдений. Вторичного инфицирования не отмечено. При бактериологических исследованиях у крыс 3-й группы на всем протяжении наблюдения выделена только монокультура S. aureus, другой сапрофитной флоры не обнаруживали.
Исследованы биохимические показатели сыворотки крови крыс на 7-е сутки с начала лечения. Было обнаружено снижение уровня МДА и активности церулоплазмина в опытной группе по сравнению с группой животных без лечения. Причем выявленные изменения имели более выраженную динамику в опытной группе животных, инфицированных музейными штаммами по сравнению с опытной группой, инфицированной клиническими штаммами. Та же направленность изменений биохимических параметров наблюдалась и в группе сравнения. Под воздействием комплексного препарата происходила постепенная нормализация показателей, что было более выражено в группе, инфицированной музейным штаммом (табл. 2).
Таблица 1
Количественное определение микроорганизмов на 1 г ткани у экспериментальных животных (КОЕ/г, М ± m)
Серии экспериментов |
1-е сутки |
3-и сутки |
5-е сутки |
7-е сутки |
Группа 1 (n = 15) |
(5,8 ± 1,3)·106 |
(7,1 ± 2,1)·108 |
(2,4 ± 1,7)·109 |
(7,3 ± 3,0)·108 |
Группа 2 (n = 15) |
(6,0 ± 1,4)·106 |
(4,1 ± 2,5)·102 р ˂ 0,001 |
(5,9 ± 1,4)·102 р ˂ 0,001 |
Роста нет |
Группа 3 (n = 15) |
(5,3 ± 2,1)·106 |
(6,9 ± 1,8)·106 |
(2,0 ± 1,3) 105 |
(6,9 ± 2,8) 103 |
Группа 4 (n = 15) |
(6,2 ± 1,5)·106 |
(5,1 ± 2,3)·102 р ˂ 0,001 |
(5,3 ± 1,1)·101 р ˂ 0,001 |
Роста нет |
Примечание: р – разница показателей в группе сравнения и соответствующей опытной группе.
Таблица 2
Биохимические показатели МДА и ЦП в сыворотке крови экспериментальных животных на 7-е сутки наблюдения
Показатель |
Животные, инфицированные клиническими штаммами St. aureus |
Животные, инфицированные музейным штаммом St. aureus |
||
Группы животных |
Группа 2 |
Группа 1 |
Группа 4 |
Группа 3 |
Активность церулоплазмина |
21,79 ± 0,47 р ˂ 0,001 |
18,8 ± 0,52 |
24,03 ± 0,46 р ˂ 0,001 |
19,78 ± 0,55 |
Содержание МДА |
3,38 ± 0,16 р ˂ 0,05 |
3,94 ± 0,11 |
3,01 ± 0,09 р ˂ 0,01 |
3,55 ± 0,14 |
Примечание: р – разница показателей в группе сравнения и соответствующей опытной группе.
Морфометрическое изучение характеристик раневой поверхности на 10-е сутки демонстрировало увеличение толщины эпидермиса на 42 % у животных опытных групп, инфицированных клиническим штаммом, и на 53 % – музейным штаммом по сравнению с соответствующими группами, не получавшими лечения. В эпидермисе обеих опытных групп наблюдалось упорядоченное расположение кровеносных сосудов в отличие от групп сравнения. Кроме того, в участках активного кровообращения отмечена выраженная пролиферация фибробластов у животных, инфицированных клиническим штаммом.
На 21-е сутки наблюдения у животных обеих опытных групп отмечено формирование полноценных кожных структур со сформированными сальными железами, тогда как в группах сравнения происходило образование рубцовой ткани, характеризующейся накоплением сульфатированных гликозаминогликанов. Структурные компоненты соединительной ткани зоны раны у животных опытных групп были представлены зрелым коллагеном, расположенным горизонтально. У крыс групп сравнения в те же сроки отмечено наличие участков метахромазии, коллагеновые волокна расположены хаотично, реже ‒ вертикально по ходу сосудов.
Заключение
Таким образом, клинические штаммы St. aureus приводят к более выраженным метаболическим и структурным изменениям, чем музейный штамм данного возбудителя. Комплексный препарат на основе хитозана и наночастиц меди и цинка проявляет выраженный антибактериальный эффект при использовании в условиях экспериментальной раны, инфицированной клиническими штаммами St. aureus, кроме того, способствует нормализации биохимических показателей липопероксидации, сокращает сроки заживления инфицированных ран.
Выводы
Разработанный комплексный препарат на основе наночастиц меди и цинка и хитозана эффективен в отношении экспериментальных ран, инфицированных как музейным, так и клиническими штаммами St. aureus.
Рецензенты:
Девдериани З.Л., д.м.н., профессор, зав. лабораторией иммунодиагностики, ФКУЗ «Российский научно-исследовательский противочумный институт «Микроб», г. Саратов;
Гладилин Г.П., д.м.н., профессор, зав. кафедрой КЛД, ГБОУ ВПО «СГМУ им. В.И. Разумовского» Минздрава России, г. Саратов.
Работа поступила в редакцию 19.06.2013.
Библиографическая ссылка
Гладкова Е.В., Бабушкина И.В., Белова С.В., Мамонова И.А., Карякина Е.В., Конюченко Е.А. ВОЗМОЖНОСТИ ИСПОЛЬЗОВАНИЯ ХИТОЗАНА И НАНОЧАСТИЦ МЕТАЛЛОВ В РЕГЕНЕРАЦИИ ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНЫХ РАН // Фундаментальные исследования. 2013. № 7-3. С. 530-533;URL: https://fundamental-research.ru/ru/article/view?id=32049 (дата обращения: 02.04.2025).