В нашей стране в молочной промышленности молокоперерабатывающие предприятия производят большие количества цельного и обезжиренного молока на сыр, творог и технический казеин, где в результате образуется побочный продукт – молочная сыворотка, которую в большинстве случаев сливают в канализацию как отходы производства, что является негативным с экологической точки зрения и просчетом с экономической.
Объемы получаемой молочной сыворотки теоретически достигают 90 % объема перерабатываемого молока: практически они несколько меньше из-за неполного сбора и технологических потерь. В сыворотку переходит около 50 % сухих веществ молока. По данным Международной молочной федерации из 120 млн т молочной сыворотки, получаемой в мире (в России – более 15 млн т), до 15 % сливается в канализацию, что приводит к безвозвратной потере около 400 тыс. т молочного белка и ряда других ценных компонентов молочного сырья [1].
В условиях дефицита и значительной стоимости молочного сырья молочную сыворотку целесообразно использовать полностью, в первую очередь для увеличения выпуска пищевых продуктов. Однако молочная сыворотка относятся к пищевым веществам, обладающим наибольшей аллергенной активностью.
Согласно базам данных IUIS, BioPep, Allergen Online, AllerMatch самыми аллергенными фракциями сыворотки, фракционный состав которой представлен в табл. 1, являются: α-лактальбумин, β-лактоглобулин и сывороточный альбумин.
β-лактоглобулин составляет около 12 % общего белка молока и 58 % сыворотки. Он обладает наибольшим аллергенным потенциалом среди сывороточных белков. Высокая иммунореактивность обусловлена его устойчивостью к протеолизу пепсином в кислой среде желудка [5].
Таблица 1
Фракционный состав сыворотки
Фракция |
Содержание, % |
β-лактоглобулин |
58 |
α-лактальбумин |
13 |
Иммуноглобулины |
12 |
Сывороточный альбумин |
6 |
Малые белки |
12 |
В целях снижения антигенных свойств молочное сырье можно подвергнуть тепловой обработке. Однако термоденатурация способна приводить как к разрушению областей антигенных детерминант, так и агрегации белковых молекул, экспонированию ранее скрытых антигенных детерминант [4].
Наиболее перспективным подходом для снижения аллергенности молочных продуктов является биокаталитическая конверсия молочных белков, направленная на получение их гидролизатов с заданными молекулярно-массовым распределением и остаточной антигенностью. Особенностью действия протеолитических ферментов является их специфичность по отношению к типу пептидной связи, что позволяет получать гидролизаты с различной степенью гидролиза белка. Негативным моментом является то, что процесс гидролиза изменяет вкусовые качества продукта – в большинстве случаев гидролизаты горьковаты на вкус [2, 3].
В связи с вышесказанным целью исследований является выбор ферментных препаратов, ведущих к снижению аллергенных свойств сыворотки.
В данном исследовании целью является выбор ферментных препаратов, ведущих к снижению аллергенных свойств молочной сыворотки.
Материалы и методы исследования
Выбор ферментных препаратов для гидролиза сырья проводился на основе анализа литературных данных по специфичности ферментов (сайты гидролиза), с помощью программы PeptideCutter (http://expasy.org.), а также данных эпитопного картирования аллергенов молочной сыворотки.
С помощью баз данных IUIS, BioPep, Allergen Online, AllerMatch выбраны все аллергенные фракции сыворотки и их эпитопы. С баз данных NCBI и BioPep получены последовательности фракций сыворотки молока.
Результаты исследования и их обсуждение
В исследовании проводился теоретический гидролиз фракций сыворотки всеми известными и доступными ферментами – протеазами, исходя из специфичности каждого фермента (табл. 2), допустимых для применения в пищевой промышленности.
Таблица 2
Специфичность ферментов
Ферментный препарат |
Происхождение |
Специфичность |
Tripsin |
Porcine or cattle pancreas |
С-терм. F,Y,W,M,L |
Chymotripsin |
Porcine or cattle pancreas |
P1: Phe, Tyr, Trp |
Alcalase Subtilisin |
Bacillius licheniformis |
P1: large uncharged amino acids – Val, Leu, Ile, Phe, Tyr,Trp |
Alcalase glutamyl-endopeptidase |
Bacillius licheniformis |
P1- Glu, Asp |
Neutrase |
Bacillius amyloliquefacience |
P’1 – Phe, Leu, Val |
Thermolysin |
Bacillius thermoproteolyticus |
P1’: Ile, Phe, Leu, Val, Ala, Met |
Protamex Subtilisin |
Bacillius subtilis |
(P1: незаряженные аминокислоты:) |
Protamex Neutral protease |
Bacillius subtilis |
(P1:Phe, Leu, Val) |
Пепсин (pH 1,3) |
Porcine or cattle gastric mucosa |
P1’: F, L, W,Y P1: нет R P2: нет P P3: нет H, K,R P2’: нет P |
Пепсин (рН 2) |
Porcine or cattle gastric mucosa |
P1’: F, L P1: нет R P2: нет P P3: нет H, K,R P2’: нет P |
Протеиназа К |
- |
P1: A,E,F,I,L,T,V,W or Y |
LysC |
P1: K |
|
Asp-N-endopeptidase |
P1: D |
После чего проводили сопоставление полученных пептидов с имеющейся базой данных эпитопов (рис. 1 и 2).
В полученных гидролизатах каждой фракции определяли количество оставшихся эпитопов, сайтов расщепления и свободных аминокислот. В табл. 3 представлены результаты анализа на примере самой аллергенной фракции β-лактоглобулина (для других фракций наблюдалась аналогичная картина).
Рис. 1. Гидролиз ферментом thermolysin β-лактоглобулина (цветом и линией обозначены эпитопы, остающиеся после гидролиза)
Рис. 2. Гидролиз ферментами Protamex и Alcalasе на примере β-лактоглобулина
Таблица 3
Сводная таблица результатов теоретического ферментативного гидролизана примере β-лактоглобулина
Фермент |
Количество оставшихся эпитопов |
Количество сайтов расщепления |
Количество свободных аминокислот |
β-лактоглобулин: количество эпитопов – 300 |
|||
Thermolysin |
13 |
67 |
30 |
Protamex Subtilisin |
11 |
56 |
17 |
Protamex Neutral protease |
42 |
41 |
11 |
Alcalase (subtilisin) |
11 |
56 |
17 |
Neutrase |
42 |
41 |
11 |
Протеиназа К |
0 |
84 |
36 |
Трипсин |
101 |
18 |
2 |
Химотрипсин (высокой специфичности) |
152 |
10 |
1 |
Химотрипсин (низкой специфичности) |
33 |
43 |
9 |
Пепсин (pH 1,3) |
39 |
57 |
25 |
Пепсин (рН 2) |
46 |
47 |
11 |
Asp-N-endopeptidase |
126 |
11 |
1 |
Как видно из табл. 3, наиболее оптимальным с точки зрения остаточной антигенности и содержания свободных аминокислот являются следующие ферменты: Protamex, Alcalase и thermolysin. При гидролизе протеиназой К наблюдается наименьшее остаточное содержание антигенных детерминант, однако при этом белки гидролизуются до высокого содержания свободных аминокислот, что является нежелательным.
С помощью гель-проникающей хроматографии был проведен анализ негорьких пептидов, выпускаемых компанией DSM. После анализа данных белковых гидролизатов с помощью гель-хроматографии получили 4000 пептидов. На каждую последовательность белка (в данном случае интересовали последовательности β-лактоглобулина, α-лактальбумина и сывороточного альбумина) накладывали полученные пептиды и проводили анализ, в соответствии с которым выбрали фермент Сorolase (экзопептидаза).
Таким образом, выбраны 4 ферментных препарата: Protamex, Alcalasе, thermolysin и Сorolase.
Дальнейшие исследования направлены на оптимизацию условий ферментативного гидролиза путем проведения многофакторных экспериментов и подбором мультиферментных композиций, обеспечивающих получение молочного сырья с низкой аллергенностью и привлекательными органолептическими характеристиками (отсутствие выраженной горечи).
Работа выполнена при поддержке научных исследований, проводимых целевыми аспирантами по научному направлению «Науки о жизни (Живые системы)» (Соглашение № 14.132.21.1781).
Библиографическая ссылка
Борисова Г.В., Новосёлова М.В., Бондарчук О.Н., Малова Ю.С. ВЫБОР ФЕРМЕНТНЫХ ПРЕПАРАТОВ С ЦЕЛЬЮ ПОЛУЧЕНИЯ ГИДРОЛИЗАТОВ МОЛОЧНОЙ СЫВОРОТКИ С НИЗКОЙ АЛЛЕРГЕННОСТЬЮ // Фундаментальные исследования. 2012. № 11-5. С. 1164-1167;URL: https://fundamental-research.ru/ru/article/view?id=30726 (дата обращения: 02.04.2025).