Рак молочной железы (РМЖ) сохраняет лидирующую позицию среди онкологической патологии у женщин во всем мире [4]. Одним из патогенетических механизмов возникновения и прогрессии опухолевого роста являются белковые медиаторы – цитокины, хемокины и ростовые факторы. Цитокины секретируются как лимфоидными, так и опухолевыми клетками [1, 2, 3, 9], оказывают влияние на множество различных клеток-мишеней, а цитокиновая сеть является важнейшим регуляторным механизмом межклеточных взаимодействий. С одной стороны, цитокины проявляют себя как факторы опухолевой прогрессии, активируя ангиогенез и миграцию опухолевых клеток, изменяют функцию клеток-мишеней, вовлечены в механизм уклонения опухолевых клеток от системы иммунного надзора [11]. С другой стороны, цитокины могут являться основными медиаторами противоопухолевого иммунитета. Концентрация и баланс уровней цитокинов и их антагонистов способствуют усилению или ингибированию роста рака молочной железы [10]. Изменения относительной концентрации некоторых цитокинов, таких как IL-1, IL-6, IL-11, IL-19, TGF-β, могут прямо и опосредованно стимулировать рак молочной железы [10]. Цитокины также могут влиять на эффективность лечения рака, усугублять токсическое воздействие химиотерапии и оказывать действие на метаболизм лекарственных препаратов. В настоящее время важная роль системы цитокинов как факторов внутренней среды организма в нормальных условиях и на разных этапах онкогенеза, как прогностических факторов при развитии социально значимых болезней не вызывает сомнений. Изучение уровня продукции цитокинов в сыворотке крови при опухолях имеет большое значение для прогнозирования выживаемости, оценки риска развития рецидивов и смертности онкологических больных. Однако данные литературы по этому вопросу часто являются противоречивыми. Проблема участия цитокинов в опухолевом росте и при применении различных способов лечения требует дальнейшего изучения.
Цель работы – определить количественные характеристики и качественные особенности цитокинового профиля крови на различных этапах онкогенеза РМЖ, провести сравнительное исследование цитокинов сыворотки крови крыс Wistar после проведения операции, полихимиотерапии, полихимиотерапии в сочетании с курсом терапии препаратом панаген.
Материалы и методы исследования
Эксперименты на лабораторных животных проведены в соответствии с «Правилами работ с использованием экспериментальных животных» (Приложение к приказу Министерства здравоохранения СССР от 12.08.1977 г. № 755) и с соблюдением принципов Хельсинкской декларации BMA (2000). Животных содержали в стандартных условиях вивария со свободным доступом к воде и пище. Забой выполняли одновременно в утренние часы.
Исследования проводили на половозрелых (возраст 3 мес.) крысах-самках породы Wistar массой 250–300 г в количестве 9–10 животных в каждой группе: 1-я группа – интактные крысы; 2-я группа – крысы с РМЖ (опухоленосители); 3-я группа – крысы с РМЖ после проведения полихимиотерапии (ПХТ); 4-я группа – крысы после удаления РМЖ (оперированные животные), 5-я группа – крысы после удаления РМЖ и ПХТ, 6-я группа – крысы после удаления ОМЖ в сочетании с ПХТ и введением препарата панаген. Опухоль индуцировали инъекцией экотоксикант N-метил-N-нитрозомочевины (MНM) в область молочной железы крысам-самкам пятикратно (1 инъекция в неделю) (Sigma-Aldrich, США) [5]. Оперативное лечение проводили через 6 месяцев от момента индукции РМЖ. Для ПХТ использовали схему ЦМФ (циклофосфан – в дозе 100 мг/м2 с 1 по 14 день; метотрексат – в дозе 40 мг/м2 в 1 и 8 дни; 5-фторурацил – в дозе 600 мг/м2 в 1 и 8) (Sigma-Aldrich, США). Курс терапии панагеном (5мг/кг) проводили внутрибрюшинным введением однократно в течение 14 дней через 3 часа после введения циклофосфана. В экспериментах использовали субстанцию препарата панаген с содержанием фрагментированной ДНК 1,7 мг/мл (ЛСР № 004429/08 от 09.06.08), выделенный из плаценты человека. Животных из эксперимента выводили через 6 месяцев под наркозом (40 мг/кг нембутана внутрибрюшинно; Sigma-Aldrich, США).
Аликвоты собранных сывороток крови замораживали и хранили при минус 20 °С до тестирования. Для исследования концентрации цитокинов использовали тест-систему Bio-Plex Pro Rat Cytokoness 24-Plex Assay (Bio-Rad, США). Содержание цитокинов в сыворотке крови выражали в пикограммах в миллилитре (пг/мл).
Результаты представлены средним значением и среднеквадратическим отклонением (M ± σ); медианой (Me), нижним и верхним квартилями (Q1; Q3). Достоверность различия рассчитывалась по U-критерию Манна – Уитни. Различия между группами считали достоверными при р < 0,05.
Результаты исследования и их обсуждение
Результаты исследования содержания цитокинов в сыворотке крови животных представлены в таблице. У крыс с РМЖ содержание большинства исследованных цитокинов, таких как, IL-1β, IL-2, IL-4, IL-6, IL-7, IL-12, IL-13, IL-17А, IFN-γ, MIP-1α, MIP-3α, RANTES, TNF-α, MCP-1, было статистически значимо выше, чем у интактных животных. Причем уровень провоспалительных цитокинов IL-1β, IL-6 и TNF-α увеличился при РМЖ в 1,8 раз (р = 0,002); в 2,5 раз (р = 0,0007); в 2,6 раз (р = 0,001) соответственно. Индуцирование РМЖ приводило к повышению уровня ряда хемокинов, таких как MIP-1α, MIP-3α, RANTES, MCP-1, в 2,1 раза (р = 0,04); в 1,5 раз (р = 0,002); в 1,7 раз (р = 0,003); в 1,2 раз (р = 0,01); соответственно, и снижению продукции GRO/KC в 1,4 раз (р = 0,02). Провоспалительные цитокины и хемокины могут способствовать метастазированию опухоли и стимулировать ангиогенез как прямо, так и опосредованно через другие биологически активные вещества. Индуцирование РМЖ приводило к снижению продукции противовоспалительного цитокина IL-10 в 1,5 раз (р = 0,02), что может способствовать иммуносупрессии и ослаблению противоопухолевой защиты. Можно предположить, что указанные цитокины, в том числе провоспалительные и хемокины, продуцируются прежде всего опухолевыми клетками, а также инфильтрирующими опухоль лимфоидными клетками. Некоторые из этих цитокинов действуют как аутокринные или паракринные факторы роста для опухолевой ткани. По мнению многих исследователей, провоспалительные цитокины внутри опухоли и ее микроокружения связаны с прогрессированием РМЖ [4, 5, 6]. Высокое содержание этих биологически активных факторов у животных с РМЖ позволяет отнести их к маркерам опухолевого роста. Полученные данные согласуются с результатами других исследователей [2, 3, 4].
Оперативное удаление опухоли приводило к достоверному снижению содержания в сыворотке крови как провоспалительных цитокинов (IL-1β, IL-2, IL-12, IL-18, ТNF-α), хемокинов (MIP-1α, MIP-3α, RANTES, GRO/KC), так и противовоспалительных цитокинов IL-4, IL-13, и ростовых факторов IL-7 и EPO, по сравнению с РМЖ. Количество IL-10 после операции осталось на уровне РМЖ.
Сравнительное исследование показателей содержания цитокинов после удаления опухоли с интактными животными показало, что содержание IL-10, IL-18, EPO, GRO/KC, RANTES было достоверно выше в группе контрольных животных. Причем уровень продукции IL-10 и EPO после операции был сопоставим с уровнем при РМЖ. Основным источником IL-10 в опухолевом микроокружении являются макрофаги, которые увеличивают экспрессию IL-10 в ответ на сигналы от гибнущих раковых клеток. Удаление первичного опухолевого очага, очевидно, ослабило сигнальные пути, и продукция IL-10 была невысокой [4]. Содержание IL-6, TNF-α и хемокина MCP-1 в группе прооперированных животных было достоверно выше по сравнению с контролем, что позволяет считать их не только провоспалительными маркерами, но и маркерами метастазирования. Доказано, что удаление первичных опухолей (без удаления региональных лимфоузлов и последующей химиотерапии) может приводить к ускорению метастазирования, что связано со многими факторами, в том числе со стимулированием ангиогенеза и лимфангиогенеза [4].
Проведение ПХТ привело к достоверному снижению содержания IL-1β, IL-4, IL-6, IL-7, IL-12, IL-18, MIP-1α, MIP-3α, RANTES в сыворотке крови крыс с РМЖ. При ПХТ в отличие от оперативного лечения не снижался уровень продукции TNF-α. Уровень IL-10 как при ПХТ, так и после операции оставался на уровне РМЖ. Вероятно, результаты отражают ингибирующий эффект цитостатиков прежде всего на опухолевые клетки, а также на функциональную активность лимфоидных клеток. Ингибирующий эффект на исследуемые ростовые факторы и хемокины такие как EPO, G-CSF GМ-CSF, М-CSF, VEGF, GRO/KC, не был достоверным.
При исследовании концентрации цитокинов в сыворотке крови крыс после удаления опухоли по сравнению с животными после удаления РМЖ и ПХТ не было обнаружено достоверных различий. Тем не менее, содержание IL-2, IL-5, IL-7, IL-13, IL-17А, G-CSF, MCP-1 в сыворотке крови было достоверно выше в группе оперированных животных по сравнению с сочетанной терапией. В данном случае отсутствуют изменения продукции маркеров метастазирования таких как IL-1β, IL-6, MIP-1α, MIP-3α, VEGF, MCP-1. Но в то же время уровень продукции хемокинов GRO/KC и RANTES выше при сочетании ПХТ и оперативного лечения. Очевидно, что GRO/KC и RANTES определяют не только метастазирование, но и хемотаксис иммунокомпетентных клеток.
Сравнительное исследование содержания цитокинов в сыворотке крови прооперированных животных после проведения полихимиотерапии и введения препарата панаген показало, что большинство показателей содержания цитокинов (IL-2, IL-4, IL-5, IL6, IL-7, IL-10, IL-12, IL-17А, IL-18, G-CSF GМ-CSF, GRO/KC, IFNγ, MIP-1α, MIP-3α) сыворотки крови было выше после введения препарата панаген. Стимулирующее влияние препарата панаген на лимфоидные клетки выражается в увеличении продукции целого ряда цитокинов. Концентрация IL-2, IL-4, IL-6, IL-17А, GМ-CSF при введении панагена была выше по сравнению с интактными животными. Это совпадает с представлениями о том, что цитостатики в сочетании с препаратом ДНК, возможно, обеспечивают противоопухолевый эффект и стимулируют лимфоидные клетки иммунной системы [8]. Установлено, что двуцепочечная ДНК (дцДНК) приводит к созреванию дендритных клеток и индуцирует гуморальный и клеточный иммунитет. Добавление фрагментов дцДНК человека в культуру дендритных клеток приводит к продукции ими Th1- цитокинов, увеличивается аллостимуляторная активность дендритных клеток, приводящая к пролиферации Т-лимфоцитов [8].
Цитостатическая терапия остается одним из основных методов лечения злокачественных новообразований в настоящее время. Однако возможности химиотерапии лимитируются выраженными побочными эффектами цитостатических препаратов, связанных в первую очередь с низкой селективностью противоопухолевого эффекта большинства известных в настоящее время цитостатиков и их токсическим влиянием на нормальные активно пролиферирующие клеточные системы организма. В связи с этим при проведении химиотерапии для повышения эффективности лечения применяют модификаторы биологических реакций – агенты различной природы, воздействующие как на опухолевые клетки, так и различные регуляторные системы организма, к которым относят и препараты ДНК (панаген). Данные литературы указывают на возможность не только усиления с помощью препаратов ДНК противоопухолевой активности цитостатических препаратов, но и стимулирующего влияния на лимфоидные клетки иммунной системы, что согласуется с полученными нами результатами [8]. Полученые результаты не противоречат представлениям других авторов о роли цитокинов в регуляции клеточного роста, ангиогенеза, метастазирования [4, 5].
Содержание цитокинов в сыворотке крови крыс опухоленосителей РМЖ по сравнению с контролем и после проведения различных видов лечения (пг/мл)
|
Содержание цитокина, (пг/мл) |
Группа животных |
|||||
|
Контрольная группа (интактные животные) M ± σ Me; (LQ-HQ) |
РМЖ M ± σ Me; (LQ-HQ) |
Животные после операции удаления РМЖ M ± σ Me; (LQ-HQ) |
Животные с РМЖ после ПХТ M ± σ Me; (LQ-HQ) |
Животные после операции удаления РМЖ и ПХТ M ± σ Me; (LQ-HQ) |
Животные после операции удаления РМЖ и полихимиотерапии и введения панагена M ± σ Me; (LQ-HQ) |
|
|
1 |
2 |
3 |
4 |
5 |
6 |
7 |
|
IL-1α |
596,4 ± 92,9 610,6; (541,8–621,1) |
600,4 ± 119,7 643,0; (563,3–670,5) |
518,0 ± 142,6 466,7; (430,0–573,6) |
400,3 ± 126,6 359,1; (276,6–486,8) • |
550,6 ± 102,9 579,5; (488,7–645,0) |
545,9 ± 125,6 611,7; (518,5645,6) |
|
IL-1β |
455,5 ± 130,8 446,0; (354,5–585,3) |
837,3 ± 169,8 726,5; (696,0–976,3) ** |
419,9 ± 135,3 394,3; (270,8–419,8) # |
585,3 ± 168,9 477,6; (435,2–680,3) • |
479,9 ± 109,6 482,0; (395,1–551,7) |
502,5 ± 171,3 559,8; (397,0–661,2) |
|
IL-2 |
1275,4 ± 173,7 1339,0; (1245,9–1443,4) |
2250,6 ± 562,5 2053,9; (1850,2–2433,8) ** |
1247,7 ± 309,0 1086,5; (1051,5–1512,2) # |
1607,4 ± 193,6 1549,7; (1483,7–1749,6) • |
862,3 ± 142,2 855,5; (732,1–962,5) ᴥ♦ |
2209,3 ± 698,3 2490,3; (1780,8–2630,9)&† |
|
IL-4 |
94,3 ± 21,6 83,8; (79,7–101,0) |
145,2 ± 26,2 125,1; (123,8–166,7) ** |
89,2 ± 28,8 98,1; (54,9–113,6) # |
110,9 ± 31,4 97,0; (85,7–115,0) • |
98,2 ± 13,3 103,2; (90,0–109,3) |
140,3 ± 28,1 144,8; (121,2–159,2) &† |
|
IL-5 |
679,3 ± 31,3 673,1; (655,5–686,7) |
675,1 ± 63,5 645,2; (608,3–731,2) |
687,5 ± 38,1 690,1; (664,0–722,7) |
682,2 ± 37,6 680,5; (640,8–728,5) |
536,0 ± 71,7 544,1; (476,6–592,7) ᴥ♦ |
659,1 ± 39,7 668,7; (614,8–691,6) † |
|
IL-6 |
482,8 ± 124,4 532,8; (431,3–567,2) |
1190,1 ± 166,5 1190,1; (1139,5–1337,7) ** |
841,4 ± 286,0 813,1; (645,0–1072,6) * |
745,4 ± 441,7 482,6; (432,0–713,0) • |
547,5 ± 146,2 484,9; (451,2–559,1) |
1048,3 ± 91,0 1033,5; (970,5–1131,8) & † |
|
IL-7 |
493,0 ± 136,1 443,1; (386,2–617,7) |
908,6 ± 317,0 744,7; (734,3–825,5) ** |
502,7 ± 154,3 453,5; (394,0–658,3) # |
549,6 ± 58,3 567,9; (504,5–586,6) • |
331,0 ± 78,9 329,5; (260,4–388,5) ᴥ♦ |
489,9 ± 138,2 449,5; (353,7–609,9) † |
|
IL-10 |
3620,2 ± 771,3 3639,6; (3223,4–4476,6) |
2434,9 ± 652,2 2292,2; (1937,3–3084,9) ** |
2375,8 ± 711,4 2291,2; (1772,6–2757,5) * |
2246,0 ± 943,5 1809,7; (1429,8–2541,4) |
2222,9 ± 278,9 2174,3; (2035,7–2368,0) ♦ |
3113,0 ± 559,4 3136,4; (2807,9–3679,1) † |
|
IL-12 |
101,0 ± 23,9 98,2; (87,6–115,0) |
171,7 ± 35,1 163,0; (142,9–191,3) ** |
86,7 ± 25,9 83,4; (73,4–113,3) # |
116,4 ± 42,7 106,5; (83,3–138,8) • |
83,7 ± 22,6 78,2; (70,3–83,7) |
121,2 ± 32,5 118,3; (100,0–151,1) † |
|
IL-13 |
298,5 ± 66,0 268,2; (236,8–309,1) |
473,4 ± 40,9 454,4; (447,8–524,4) ** |
316,6 ± 97,7 302,2; (234,7–411,3) # |
416,7 ± 150,6 378,4; (288,0–502,2) |
173,1 ± 32,5 184,0; (133,4–220,4) ᴥ ♦ |
344,9 ± 144,5 327,7; (185,0–417,7) |
|
IL-17 А |
179,7 ± 28,2 173,8; (156,5–197,8) |
253,1 ± 67,9 238,2; (186,4–317,2) ** |
190,5 ± 41,6 188,1; (159,0–232,7) |
176,0 ± 42,4 164,5; (145,3–221,4) • |
137,5 ± 17,2 136,7; (126,6–148,7) ᴥ ♦ |
303,0 ± 142,7 235,7; (200,7–272,1) & † |
|
IL-18 |
8192,1 ± 3348,7 10449,8; (4657,2–10990,0) |
9199,0 ± 1057,8 9726,5; (8806,5–9988,8) |
2242,9 ± 818,2 1870,3; (1658,4–2409,6) *# |
3569,7 ± 938,1 3169,1; (2827,3–3657,3) • |
2466,2 ± 749,2 2103,7; (1812,0–2646,4) ♦ |
7424,4 ± 2447,4 7985,6; (6048,1–9673,5) † |
|
EPO |
2317,9 ± 1040,5 2306,0; (1319,5–3240,1) |
2072,1 ± 1065,7 1494,4; (1295,9–2191,3) |
1956,6 ± 1911,9 860,2; (840,1–1041,9) *# |
1535,8 ± 463,2 1554,1; (1123,1–1888,2) |
1268,3 ± 435,0 1145,7; (883,4–1561,6) ♦ |
1992,7 ± 1086,4 2165,0; (670,5–2834,7) |
|
1 |
2 |
3 |
4 |
5 |
6 |
7 |
|
G-CSF |
15,6 ± 4,2 17,3; (10,1–19,9) |
24,7 ± 6,4 29,5; (19,6–29,8) ** |
16,9 ± 5,2 19,9; (10,1–20,4) |
18,0 ± 8,0 15,0; (10,0–26,0) |
8,7 ± 2,0 9,9; (9,6–10,1) ᴥ♦ |
34,9 ± 28,8 19,9; (17,3–22,6) † |
|
GM-CSF |
361,4 ± 84,6 336,7; (294,3–366,0) |
428,5 ± 152,0 427,6; (324,3–546,9) |
381,0 ± 148,9 423,4; (224,1–530,1) |
399,6 ± 83,3 361,3; (330,4–444,6) |
315,5 ± 91,5 314,1; (232,1–390,3) |
433,5 ± 139,2 485,4; (364,2–573,2) &† |
|
GRO/KC |
4115,0 ± 1073,5 3915,4; (3510,9–5457,8) |
2971,9 ± 416,2 2917,4; (2535,1–3489,3) ** |
1182,8 ± 239,8 1175,4; (1108,0–1467,9) *# |
4224,3 ± 2187,2 3487,5; (2787,9–5026,8) |
2097,1 ± 242,4 2108,2; (2023,4–2246,1) ᴥ♦ |
3744,4 ± 549,1 3649,6; (3621,3–4037,2) † |
|
IFNγ |
112,6 ± 40,6 87,5; (80,6–151,2) |
165,3 ± 59,7 201,7; (113,9–209,4) ** |
123,4 ± 49,0 125,3; (88,4–173,0) |
120,9 ± 88,0 74,4; (52,9–125,3) |
75,3 ± 17,9 83,2; (75,7–88,0) ᴥ |
158,6 ± 52,9 170,6; (129,1–213,1) † |
|
M-CSF |
489,6 ± 88,0 455,4; (441,8–543,1) |
459,5 ± 136,5 351,6; 344,3–523,4) |
433,3 ± 30,8 426,4; (413,3–438,5) |
372,4 ± 92,8 332,8; (290,5–469,5) |
408,3 ± 123,1 401,7; (316,5–532,1) |
466,5 ± 50,2 486,2; (420,4–498,2) |
|
MIP-1 α |
1519,7 ± 680,0 1147,3; (973,6–1515,8) |
3340,4 ± 2119,6 2178,6; (1539,1–5606,7) |
1283,7 ± 363,9 1148,3; (1005,2–1448,0) # |
1211,3 ± 403,6 1195,1; (859,9–1413,2) • |
955,5 ± 177,1 952,2; 861,8–1017,6) |
2648,0 ± 1881,9 1427,5; (1068,8–3232,4) † |
|
MIP-3 α |
229,9 ± 32,6 205,9; (203,0–250,4) |
333,8 ± 32,6 349,6; (314,9–361,3) ** |
214,3 ± 32,5 216,4; (183,4–246,9) # |
271,3 ± 41,1 276,8; (239,4–302,4) • |
207,8 ± 31,2 203,3; (182,0–233,8) |
266,6 ± 59,5 294,0; (215,3–322,6) † |
|
RANTES |
3050,3 ± 1039,0 3204,8; (1819,9–3650,7) |
5240,0 ± 751,9 4942,2; (4645,9–5769,4) ** |
2975,6 ± 892,3 2689,1; (2154,8–3186,9) *# |
3903,5 ± 577,0 3942,6; (3492,3–4259,1) • |
3782,5 ± 377,0 3717,9; (3486,3–4012,2) ᴥ |
4080,5 ± 567,3 4261,8; (3895,5–4683,3) |
|
TNFα |
26,6 ± 10,1 25,0; (19,7–37,5) |
67,7 ± 5,8 69,9; (60,2–70,5) ** |
38,7 ± 8,7 35,3; (30,1–49,9) *# |
50,0 ± 22,9 39,9; (30,1–65,0) |
44,0 ± 11,4 39,9; (38,1–44,5) ♦ |
45,8 ± 10,8 43,1; (37,5–49,9) & |
|
VEGF |
63,6 ± 8,0 63,7; (57,8–70,3) |
66,4 ± 12,6 64,4; (53,4–81,3) |
62,0 ± 26,3 49,1; (37,0–96,5) |
63,5 ± 14,2 58,0; (52,2–70,3) |
44,3 ± 5,8 40,9; (40,3–42,5) ♦ |
46,4 ± 9,4 43,4; (39,9–51,3) & |
|
MCP-1 |
3325,8 ± 257,5 3307,3; (3055,5–3436,7) |
3916,5 ± 134,1 3920,6 (3900,7–4013,6) ** |
4528,4 ± 1276,4 3931,5; (3594,9–4116,3) * |
3604,7 ± 463,9 (3174,3–3827,9) |
2916,0 ± 431,7 3169,9; (2490,9–3316,1) ᴥ |
3284,9 ± 642,7 3316,1; (2621,5–3977,3) |
Примечание. Обозначены статистически значимые отличия от величин соответствующих показателей сыворотки крови: интактных (** при p < 0,05), от сыворотки крови крыс с РМЖ. интактных (* – при p < 0,05), от сыворотки крови крыс после операции удаления РМЖ, интактных (♦ – при p < 0,05), от сыворотки крови крыс после операции удаления РМЖ и ПХТ. (интактных (& при p < 0,05), от сыворотки крови крыс после операции удаления РМЖ и ПХТ и введения панагена. РМЖ (# – при p < 0,05), сыворотки крови оперированных животных. РМЖ (• – при p < 0,05), сыворотки крови РМЖ после ПХТ. Животных после операции удаления РМЖ(ᴥ – при p < 0,05), сыворотки крови животных после операции удаления РМЖ и ПХТ. Животных после операции удаления РМЖ в сочетании с ПХТ († – при p < 0,05), по сравнению с животными после операции удаления РМЖ и проведения ПХТ и введения панагена.
Опухолевые клетки способны продуцировать различные цитокиновые молекулы и имеют к ним рецепторы, что позволяет осуществлять аутокринную регуляцию собственной жизнедеятельности. В процессе опухолевой прогрессии появляются новые свойства опухолевых клеток и локального микроокружения (включающего фибробласты, эндотелиоциты, иммунные клетки, компоненты экстрацеллюлярного матрикса), которые способствуют диссеминации путем регуляции воспаления, клеточной миграции, пролиферации и инвазии опухолевых клеток, стимуляции роста лимфатических сосудов [13, 14]. Показано, что один и тот же цитокин может проявлять различные эффекты на разных стадиях опухолевого процесса [4]. Результаты некоторых исследователей показали, что содержание всех изученных цитокинов в опухолевой ткани было существенно выше, чем в неизмененной ткани. Так, IL-6, IL-8, IL-10 могут продуцироваться опухолевыми клетками и служить факторами роста и прогрессии опухоли, что совпадает с полученными нами результатами [4, 6]. Характер течения, эффективность лечения и исход РМЖ, с одной стороны, определяются биологическими свойствами опухолевых клеток, с другой – могут модулироваться различными факторами организма. В процесс взаимодействия «опухоль – организм» вовлекается множество цитокинов.
Согласно современным исследованиям, наиболее перспективными в качестве маркеров опухолевого роста и прогностических факторов при злокачественных новообразованиях являются цитокины IL-1β, TNFα, IL-6 и IL-4. Известно, что провоспалительные цитокины IL-6, ТNF-α и IL-1β, которые вырабатываются как лимфоцитами, так и опухолевыми клетками, проявляют себя как факторы усиления опухолевой прогрессии, активирующие ангиогенез и миграцию опухолевых клеток, а ТNF-α, являясь индуктором апоптоза, может вызывать усиление гибели лимфоцитов, и миграции в этот орган опухолевых клеток [5, 6]. Для ряда солидных опухолей человека показана корреляция уровня данных цитокинов с агрессивностью течения онкологических заболеваний, метастатическим потенциалом, риском развития рецидивов и продолжительностью жизни больных [12]. С увеличением тяжести опухолевой прогрессии повышается способность клеток крови к продукции цитокинов, обладающих мощным проопухолевым влиянием, то есть активируются механизмы положительной обратной связи.
Заключение
При проведении сравнительного исследования цитокинового профиля сыворотки крови крыс Wistar установлено, что количественное содержание цитокинов при РМЖ зависит от типа проводимой терапии по поводу заболевания. РМЖ стимулирует продукцию как провоспалительных, так и противовоспалительных цитокинов, основными продуцентами которых являются иммунокомпетентные клетки, клетки опухолевого микроокружения и самой опухоли. Продукция цитокинов может изменяться в процессе прогрессирования, подавления развития опухоли или метастазирования. Уровни цитокинов сыворотки крови могут служить прогностическим критерием эффективности проводимой терапии и риска метастазирования РМЖ.
Рецензенты:
Бгатова Н.П., д.б.н., профессор, заведующая лабораторией ультраструктурных исследований, ФГБНУ «Научно-исследовательский институт клинической и экспериментальной лимфологии», г. Новосибирск;
Мичурина С.В., д.м.н., профессор, руководитель группы гистолимфатических отношений, главный научный сотрудник лаборатории функциональной морфологии лимфатической системы, ФГБНУ «Научно-исследовательский институт клинической и экспериментальной лимфологии», г. Новосибирск.